Цель исследования – изучить влияние комбинированного применения иммуномодуляторов на неспецифическую резистентность телят в ранний постнатальный период выращивания. Задачи: изучить динамику морфо-биохимических, иммунологических показателей крови при комбинированном применении иммуномодуляторов телятам в ранний постнатальный период выращивания; определить оптимальное сочетание, кратность введения иммуномодуляторов телятам в ранний постнатальный период для повышения неспецифической резистентности. Научно-производственный опыт проведен на телятах черно-пестрой породы в ранний постнатальный период выращивания в Алтайском крае. В соответствии с задачами было сформировано 6 групп подопытных животных, одна из которых контрольная. Телятам контрольной группы вводили физиологический раствор в дозе 5,0 мл. Телятам опытных групп соответственно иммуномодуляторы в определенной последовательности и сочетании. На основании полученных результатов по использованию иммуномодуляторов для повышения неспецифической резистентности организма телят лучшим протоколом является двукратное чередование инъекций фоспренил – иммунофан – фоспренил – иммунофан с интервалом 6–2–6 суток (О-3). У животных данной группы отмечали максимальное увеличение общего количества белка (на 4,5 %), альбуминов (на 1,8 %), что указывает на активацию и улучшение метаболических процессов. Бактерицидная активность сыворотки крови телят на всем протяжении опыта находилась в пределах физиологической нормы, при незначительном снижении гамма-глобулинов на 0,4 и росте на 21,3 % лизоцимной активности, что указывает на положительные компенсаторные реакции и уровень неспецифической резистентности организма животных, способствует снижению заболеваемости на 60,0 % и увеличению сохранности до100,0 %.
белок, гемоглобин, телята, иммуномодуляторы, лейкоциты, резистентность, эритроциты, неспецифическая резистентность
Введение. Нарушение условий содержания, несбалансированность рационов кормления негативно влияют на состояние здоровья продуктивных животных путем снижения иммунологической резистентности и обмена веществ в организме [1]. Известно, что новорожденные животные наиболее восприимчивы к воздействию неблагоприятных факторов внешней среды [2]. Высокая заболеваемость и гибель телят в первые дни жизни объясняются прежде всего отсутствием у них развитой системы регуляции их жизненно важных функций, несовершенством пищеварительной системы и иммунной защиты организма [3]. На сегодняшний день ветеринарной науке известно достаточно большое количество природных и синтетических фармакологических средств для стимуляции иммуногенеза и общей резистентности организма животных. Не многие из их числа применяются в ветеринарной практике и нет достаточно эффективных и простых способов фармакологической коррекции иммунного статуса животных [4]. Поддержание на высоком уровне защитно-приспособительных реакций организма животных к воздействию негативных факторов окружающей среды в критические периоды раннего постнатального периода остается актуальной проблемой [5, 6].
В связи с этим существует необходимость в изучении и усовершенствовании существующих схем применения иммуномодуляторов, что позволит оптимизировать протоколы их использования в производственных условиях для расширения арсенала и возможности фармакотерапии неспецифической резистентности телят.
Цель исследований – изучить влияние комбинированного применения иммуномодуляторов на неспецифическую резистентность телят в ранний постнатальный период выращивания.
Задачи: изучить динамику морфо-биохимических, иммунологических показателей крови при комбинированном применении иммуномодуляторов телятам в ранний постнатальный период выращивания; определить оптимальное сочетание, кратность введения иммуномодуляторов телятам в ранний постнатальный период для повышения неспецифической резистентности.
Материалы и методы. Научно-производственный опыт по изучению комбинированного использования иммуномодуляторов для повышения уровня неспецифической резистентности организма телят крупного рогатого скота в ранний постнатальный период провели в филиале «ПЗ Комсомольское» (Алтайский край) в 2022 г.
Для этого сформировали 5 опытных и 1 контрольную группы не менее 5 животных в каждой. Телятам контрольной группы вводили физиологический раствор в дозе 5,0 мл. Телятам опытных групп соответственно подкожно иммуномодуляторы по схемам, представленным в таблице 1.
Таблица 1
Протоколы введения иммуномодуляторов телятам
|
Группа |
Кол-во, гол. |
Кратность / интервал между введениями, дней |
Иммуномодулятор, мл |
||||||
|
Фоспренил |
Миксоферон, доз |
Иммунофан |
Фоспренил |
Миксоферон, доз |
Иммунофан |
Миксоферон, доз |
|||
|
К-1 |
10 |
4 / 2 |
– |
– |
– |
– |
– |
– |
– |
|
О-1 |
5 |
4 / 2 |
– |
5 |
1,0 |
– |
5 |
1,0 |
– |
|
О-2 |
5 |
4 / 2 |
– |
– |
1,0 |
– |
5 |
1,0 |
5 |
|
О-3 |
5 |
4 / 6-2-6 |
2,5 |
– |
1,0 |
2,5 |
– |
1,0 |
– |
|
О-4 |
5 |
3 / 2-6 |
– |
– |
1,0 |
2,5 |
5 |
– |
– |
|
О-5 |
5 |
3 / 2-6 |
– |
5 |
– |
2,5 |
– |
1,0 |
– |
Оценку эффективности использования иммуномодуляторов проводили по следующим методикам: клинико-физиологическое состояние – общепринятыми в ветеринарии методами; определение общего количества эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина – общепринятыми в ветеринарии методами [7]; биохимические исследования сыворотки крови – содержание общего белка рефрактометрически (ИРФ-454 Б 2 М), фракции белка – нефелометрическим методом [8]; бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови – фотонефелометрическим методом [9]; общее количество иммуноглобулина класса IgG – ИФА с использованием соответствующего набора.
Забор крови проводили перед инъекциями испытуемых иммуномодуляторов и через 10 дней после окончания введения. Достоверность средних значений оценивали по критерию достоверности по Стьюденту-Фишеру.
Результаты и их обсуждение. При изучении фоновых показателей крови телят крупного рогатого скота, участвующих в опыте, по использованию иммуномодуляторов в ранний постнатальный период выращивания установили, что в среднем общее количество белка, белковых фракций сыворотки крови находилось в пределах физиологической нормы, при снижении на 45,0 % иммуноглобулинов класса G (IgG) (табл. 2).
Таблица 2
Содержание общего количества белка и его фракций в сыворотке крови подопытных телят до и после инъекций иммуномодуляторов
|
Группа |
Общее кол-во белка, г/л |
Альбумины, % |
Глобулины, % |
Ig класса G |
А/Г, ед. |
||||
|
α |
β |
Γ |
Общее л-во, Ед/мл |
В % от числа обследованных |
|||||
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
|
|
Исходные показатели крови |
|||||||||
|
|
46,1–72,8 61,4±7,49 |
42,1–66,2 51,5±8,56 |
7,9–23,9 12,1±6,19 |
7,8–16,6 12,1±3,19 |
18,7–40,9 24,1±7,76 |
0–11,2 5,5±4,92 |
28,5 |
0,58–1,42 1,12±0,394 |
|
|
Норма |
61–63 |
38–50 |
12–20 |
10–16 |
25–40 |
< 10 |
– |
0,83–1,19 |
|
|
Показатели крови по окончании опыта |
|||||||||
|
К-1 |
58,0–58,3 58,2±0,11 |
33,6–57,4 50,6±9,36 |
7,0–9,9 8,3±2,97 |
9,1–23,8 17,9±6,26 |
19,5–39,5 23,2±7,81 |
1,3–3,6 2,5±0,94 |
100 |
0,78–1,34 1,02±0,338 |
|
Окончание табл. 2
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
|
О-1 |
57,6–62,4 59,8±2,16 |
50,1–59,4 53,4±4,63 |
4,8–7,0 5,9±0,98 |
11,7–19,1 15,8±2,28 |
22,8–27,3 24,9±1,54 |
2,5–6,1 4,8±1,46 ** |
100 |
1,00–1,88 1,14±0,230 |
|
О-2 |
54,2–62,4 59,2±3,96 |
40,0–58,4 50,5±8,47 |
6,3–10,0 8,5±3,25 |
11,9–25,6 16,2±6,56 |
19,7–31,1 24,8±5,18 |
2,0–11,2 6,7±3,55** |
100 |
0,66–1,40 1,02±0,335 |
|
О-3 |
52,5–70,0 64,2±7,45 |
56,0–59,4 53,3±1,81 |
7,8–15,0 9,6±1,04 |
10,5–24,7 13,4±4,90 |
16,5–29,3 23,7±3,49 |
5,3–7,8 6,9±0,98* |
100 |
1,27–1,48 1,14±0,104 |
|
О-4 |
58,3–62,4 60,6±1,88 |
39,1–60,0 50,7±13,69 |
8,2–15,5 9,9±2,37 |
8,9–20,3 15,9±8,24 |
16,6–30,4 23,5±7,71 |
3,7–5,2 4,3±0,56* |
100 |
0,64–2,03 1,03±0,661 |
|
О-5 |
58,3–68,2 63,9±4,55 |
40,2–53,8 50,9±6,11 |
8,0–13,9 10,7±5,64 |
10,4–20,2 14,0±1,17 |
25,7–30,0 24,4±1,92 |
2,1–7,6 4,9±1,94** |
100 |
0,67–1,16 1,04±0,219 |
Примечание: числитель – минимальные и максимальные показатели, знаменатель – среднее значение по группе; *– Р < 0,05, ** – Р < 0,01 по отношению к контрольной группе.
По завершении опыта в сыворотке крови телят подопытных групп отмечали снижение общего количества белка в сравнении с исходными данными в К-1 группе на 5,2 %, соответственно в О-1 – на 2,6 %; в О-2 – на 3,5; в О-4 – на 1,3 %, увеличение данного показателя у животных О-3 и О-5 групп – на 4,5 и 4,0 % соответственно. Количество альбуминов сыворотки крови, основной функцией которых является поддержание онкотического давления крови, транспорт различных химических веществ и участие в метаболических процессах, увеличилось у телят О-1 и О-3 групп на 1,9–2,8 и 1,8–2,7 % по сравнению с исходными показателями и контролем. Фракция альфа-глобулинов, в среднем по группам, от исходных показателей снизилась в К-1 на 3,8 %; в О-1 – на 6,2; в О-2 – на 3,6; в О-3 – на 2,5; в О-4 – на 1,2; в О-5 – на 1,4 %. При этом бета-глобулиновая фракция, компоненты которой участвуют в иммунных реакциях, от первоначальных значений увеличилась в К-1 на 5,8 %, соответственно в О-1 и О-4 группах – на 3,7 и 3,8 %, в О-2 – на 4,1, максимально в О-3 группе – на 1,3 %, соответственно в О-5 на 1,9 %. Гамма-глобулины, функционально представляющие собой антитела, обеспечивающие гуморальную иммунную защиту организма от инфекций и чужеродных веществ, находились на нижней границе физиологической нормы с незначительным снижением на 0,4–0,9 % в К-1, О-3 и О-4 группах телят по отношению к первоначальным значениям. Альбумин-глобулиновое соотношение на всем протяжении опыта находилось в пределах физиологической нормы.
В начале опыта антитела IgG выявили у 28,5 % обследованных новорожденных телят, по окончании опыта они присутствовали у 100,0 % и находились ниже физиологических норм от 31,0 (О-3) до 75,0 % (К-1) у всех подопытных телят, кроме телят О-2 группы, где у 40,0 % обследованных данный показатель был в референтных пределах.
Общее количество эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, цветной показатель, бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови перед постановкой опыта находились в пределах референтных границ (табл. 3).
Таблица 3
Гематологические показатели крови подопытных телят
до и после инъекций иммуномодуляторов
|
Группа |
Эритроциты, 109/л |
Гемоглобин, г/л |
Лейкоциты, 1012/л |
Цветной показатель, ед. |
БАСК, % |
ЛАСК, % |
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
Исходные показатели крови |
||||||
|
|
5,64–9,46 8,2±1,05 |
90–130 111,4±13,3 |
4,6–6,8 5,2±0,79 |
0,81–1,3 1,0±0,16 |
14,7–64,7 28,6±20,73 |
5,0–11,1 7,9±3,06 |
|
Норма |
7,7–8,2 |
99–129 |
4,5–12,0 |
0,7–1,1 |
23–53 |
25–33 |
Окончание табл. 3
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
Показатели крови по завершении опыта |
||||||
|
К-1 |
7,7–9,4 8,7±0,89 |
85–110 93,3±9,83 |
4,6–6,4 5,4±0,80 |
0,85–0,90 0,83±0,11 |
19,5–60,4 40,3±20,46 |
9,7–31,6 18,4±11,99 |
|
О-1 |
8,0–10,0 9,0±0,87 |
90–104 96,6±7,02 |
4,8–5,8 5,3±0,45 |
0,80–0,87 0,83±0,07 |
19,5–57,1 41,1±15,97 |
9,0–36,9 28,5±13,34 |
|
О-2 |
7,8–10,3 8,9±0,91 |
92–110 102,3±9,29 |
5,4–6,4 6,0±0,47 |
0,83–0,91 0,89±0,10 |
26,6–64,7 45,6±15,02 |
18,6–33,8 26,5±7,63* |
|
О-3 |
9,2–10,9 9,4±0,49 |
100–128 113,3±12,56(**) |
4,8–6,8 5,8±0,47 |
0,84–0,95 0,93±0,10 |
24,2–67,6 46,7±17,98 |
16,6–35,0 29,2±7,52* |
|
О-4 |
7,8–9,7 9,1±0,77 |
95–114 104,6±8,50 |
4,6–8,8 6,6±1,87 |
0,85–0,92 0,89±0,02 |
23,8–53,3 40,7±11,84 |
15,0–25,0 21,0±5,47* |
|
О-5 |
7,2–9,4 8,3±0,72 |
96–105 102,6±3,91 |
4,6–6,4 5,8±0,93 |
0,86–1,03 0,96±0,07 |
38,0–65,2 45,6±12,25 |
17,7–28,1 24,6±4,25* |
Примечание: числитель – минимальные и максимальные показатели, знаменатель – среднее значение по группе; * – Р < 0,05 по отношению к исходным данным, ** – Р < 0,01 к контрольной группе.
После окончания опыта в крови телят К-1 и О-1 групп регистрировали снижение общего количества гемоглобина ниже физиологической нормы на 5,7 и 2,4 % при достоверном его увеличении на 21,4 % в О-3 группе в сравнении с животными контрольной группы. Увеличение общего числа эритроцитов в крови телят, участвующих в научно-производственном опыте, вероятно, связано с присутствием молодых ретикулоцитов, так как цветной показатель находился в референтных пределах на всем протяжении эксперимента.
Бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови (БАСК и ЛАСК) относятся к факторам неспецифической резистентности организма. БАСК является показателем активности фагоцитоза, а именно – нейтрофилов и моноцитов. Увеличение данного показателя по завершении опыта отмечали в К-1 на 11,7 %, в опытных группах – на 12,1–18,0 % от исходных значений, которые находились в референтных пределах. ЛАСК – это антибактериальный фермент, достоверное увеличение которого отмечали у телят О-2–О-5 групп от 13,1 (О-4) до 21,3 % (О-3), что указывает на пролиферативную активность гранулоцитов, моноцитов, макрофагов, которые секретируют его в сыворотку крови.
Заболеваемость телят в контрольной группе составила 100,0 %, в среднем по опытным группам 60,0 %, соответственно в О-1 и О-4 – 60,0 %; в О-2 и О-5 – 80,0; в О-3 группе – 40,0 %. Сохранность телят во О-2–О-5 группах составила 100,0 %, соответственно в О-1 группе – 80,0 %, в К-1 – 70,0 %.
Данные, представленные на рисунке, свидетельствуют о том, что абсолютный (среднесуточный) прирост у подопытных телят не имел достоверных различий ни в ходе опыта, ни за 3-месячный период наблюдения.
Абсолютный прирост живой массы тела подопытных телят
после инъекций иммуномодуляторов
Максимальный абсолютный прирост массы тела по окончании опыта среди подопытных телят был в О-3 группе, превысил показатели контрольной группы на 13,1 %, по отношению к другим опытным группам – на 25,0–73,0 %. За весь период наблюдения данная тенденция сохранялась, у телят О-3 группы абсолютный прирост по отношению к контрольной группе остался выше на 3,2 %, по отношению к другим опытным группам – на 20,1–75,9 %.
На протяжении научно-производственного опыта по изучению комбинированного введения иммуномодуляторов телятам в ранний постнатальный период выращивания не выявлено отрицательных клинически выраженных побочных явлений, зрение, слух, вкус и обоняние сохранены, они хорошо реагировали на внешние раздражители. Движения животных – свободные, координированные. На основании полученных результатов по использованию иммуномодуляторов для повышения неспецифической резистентности организма телят в ранний постнатальный период лучшим протоколом является двукратное чередование инъекций фоспренил – иммунофан – фоспренил – иммунофан с интервалом 6–2–6 сут (О-3). У животных, инъецированных по данной схеме, отмечали максимальное увеличение общего количества белка на 4,5 %, альбуминов – на 1,8 %, что указывает на активацию и улучшение метаболических процессов в организме животных. БАСК на всем протяжении опыта находилась в пределах физиологической нормы, при незначительном снижении гамма-глобулинов на 0,4 % и росте на 21,3 % ЛАСК, что указывает на положительные компенсаторные реакции и уровень неспецифической резистентности организма. Лучший абсолютный прирост массы тела по завершении опыта и за весь период наблюдения был у телят с применением данного протокола, при 100,0 % сохранности и снижении заболеваемости на 60,0 % по сравнению с контролем.
Заключение. Анализ полученных данных показал, что влияние иммуномодуляторов на морфо-биохимические показатели крови, неспецифическую резистентность телят в ранний постнатальный период выращивания было неоднозначно и зависело от последовательности и кратности введения препаратов. Установлено, что чередование иммуномодуляторов фоспренил – иммунофан – фоспренил – иммунофан в дозах 2,5 и 1,0 мл с интервалом 6–2–6 суток позволяет расширить профилактические и терапевтические возможности используемых препаратов для повышения неспецифической резистентности, снижения заболеваемости на 60,0 % и увеличения сохранности телят до100,0 %.
1. Козицына А.И. Применение «Элитокса» для нормализации обменных процессов коров-матерей и повышение резистентности телят: дис. … канд. ветеринар. наук: 06.02.05. СПб., 2018. 179 с.
2. Исследование эффективности разных способов повышения колострального иммунитета у новорожденных телят / О.В. Харитонова [и др.] // Проблемы биологии продуктивных животных. 2018. № 2. С. 81–93.
3. Петрянкин Ф.П., Петрова О.Ю. Болезни молодняка животных. 2-е изд., перераб. и доп. СПб.: Лань, 2014. 352 с.
4. Зубова Т.В., Плешков В.А, Миронов А.Н. Применение иммуномодулятора Азоксивет при выращивании телят: сб. ст. / под ред. В.И. Трухачева [и др.]. М.: РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2021. С. 24–29.
5. A Сalf-level study on colostrum management practices associated with adequate transfer of passive immunity in Québec dairy herds / M.P. Morin [et al.] // Journal of Dairy Science. Vol. 104, Iss. 4, April 2021, P. 4904–4913.
6. Николаев С.В. Влияние рекомбинантного интерферона на морфо-биохимические показатели крови телят в раннем постнатальном онтогенезе // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2020. № 10. С. 57–61.
7. Кудрявцев А.А., Кудрявцева Л.А. Клиническая гематология животных. М:. Колос, 1974. 399 с.
8. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной и клинической лабораторной диагностики. М:. Колос, 2004. 520 с.
9. Гугушвили Н.Н. Иммунологические методы исследования в ветеринарии: метод. рекомендации. Краснодар, 2001. С. 50–53.
