Russian Federation
Russian Federation
Russian Federation
The FGBNU FARC of the North-East in 2019–2021 conducted an immunological assessment and analysis of the effect of fungal diseases on the photosynthetic complex and infection of seeds in 16 barley varieties created over the past 30 years to substantiate the genotypic and physiological adaptation of plants to mycosis. The study was carried out on a phytopathological site with artificial inoculation with Helminthosporium spp. and evaluated for resistance to root rot, net and dark brown spots using well-known methods. Varieties Dina, Forward, Dobryak and new lines 288-12, 52-12 and 94-13 are characterized by high and moderate resistance to diseases. A trend has been found to reduce root rot and dark brown spotting in barley lines, but there is no progress in breeding with respect to net spotting. Eight microbial taxa were identified in the structure of seed microflora. The species Bipolaris sorokiniana was identified in all seed samples, with the exception of the Dina variety, with a share in the contaminant from 8.2 % (Andrei) to 71.0 % (Pamyat Rodina) and an average of 41.1 % for the assortment; species of Alternaria spp. and Bacillus spp – in 14 seed samples with an average share of 30.8 and 8.0 %; Fusarium spp. – in 13 varieties with an average share of 6.8 %. A weak relationship (r) between seed infection and the development of root rot (r = 0.24), dark brown and net spot (r = 0.25 and r = 0.16) was revealed; medium and significant relationship (at P ≥ 095) – between the development of root rot and dark brown leaf spot (r = 0.56). The negative effect of dark brown spotting was manifested in a decrease in the content of Chl a (r= -0.134) and Car (r= -0.217); net spotting – in a decrease in SSC (r = -0.439); root rot – in the reduction of Chl a (r= -0.325), Chl b (r= -0.316) and Car (r= -0.371).
Hordeum vulgare L., net blotch, spot blotch, root rot, resistance, seed contamination, photosynthetic pigments, correlations
Введение. Широкий ареал возделывания ярового ячменя объясняется многогранным использованием зерна в пищевой, пивоваренной, комбикормовой и фармацевтической промышленности [1]. В структуре посевных площадей Кировской области ячмень занимает 70–80 тыс. га,
более трети которых занято сортами селекции ФАНЦ Северо-Востока [2, 3].
Несмотря на приспособленность этой культуры к разнообразию средовых факторов (почвенных, производственных) и биотическую устойчивость отдельных сортов, экстремальные агроклиматические условия часто провоцируют усиление вредоносности гельминтоспориозных болезней: корневых гнилей и темно-бурой пятнистости листьев (Bipolaris sorokiniana (Sacc.) Shoem, телеоморфа Cochliobolus sativus Ito et Kurib.), полосатой (Drechslera graminea, телеоморфа Pyrenophora graminea Ito et Kurib.) и сетчатой (Drechslera teres, телеоморфа Pyrenophora teres Shotm.) пятнистости [3–5]. Интенсивное развитие этих болезней в сортовых биоценозах увеличивает фитосанитарные риски зернопроизводства, поскольку чревато инфицированием формирующегося зерна. Как правило, зерновая масса после уборки представляет собой смесь, состоящую из биологических компонентов, включающих зерно основной культуры, токсичное дефектное зерно и микроорганизмы (грибы, бактерии), присутствующие на поверхности или (и) внутри зерна. По данным В.А. Захаренко и А.С. Васютина [6], потери урожая при выращивании зерновых культур, поражаемых фитопатогенами, составляют 0,283 т/га.
Негативное влияние на общий гомеостаз и продукционный процесс имеют также физиолого-биохимические процессы, обусловленные биотическим и иным поражением листового аппарата растений [7]. Так, ухудшение функции листьев (хлоропластов) проявляется в уменьшении содержания хлорофиллов (Chl a и Chl b), снижении индекса площади зеленого листа и биомассы в целом, что влияет на интенсивность фотосинтеза. Недостаток Chl b запускает преждевременную программу онтогенетического старения, поскольку он активен в регуляции развития растений [8]. Растения с высоким содержанием Chl a и Chl b, каротиноидов (Car) и светособирающих комплексов (ССК) поглощают больше энергии и имеют высокую интенсивность фотосинтеза. Принято считать, что оптимизация работы фотосинтетического аппарата способствует росту продуктивности растений до 60 % [9, 10].
Несмотря на то что поражение болезнями можно рассматривать как существенный стрессовый фактор, воздействующий на физиологические и продукционные процессы растений, некоторые восприимчивые сорта ячменя способны формировать высокий урожай, поскольку обладают толерантностью к фитопатогенам. Поэтому изучение генотипической (сортовой) и физиологической адаптации растений к микозному поражению листового аппарата и корневой системы растений на фоне повышенной инфекционной нагрузки патогенов представляет значимый научный и практический интерес. Усилия селекционеров должны быть направлены не только на активизацию фотосинтетического аппарата, но и на создание генотипов, обладающих высокой устойчивостью к стрессорам биогенного и абиогенного типа, что особенно актуально для нашей страны с большим разнообразием почвенно-климатических условий [11, 12].
Поскольку значительную селективную роль в болезнеустойчивости имеет генотип, целью исследований была иммунологическая оценка сортов ярового ячменя, созданных в ФАНЦ Северо-Востока за последние 30 лет, и анализ влияния грибных болезней на фотосинтетический комплекс и зараженность семян.
Условия, материал и методы. Материалом исследований было 16 сортов и новых линий ярового ячменя селекции ФГБНУ ФАНЦ Северо-Востока. Их изучали в 2019–2021 гг. на однометровых делянках фитопатологического участка при искусственной инокуляции видами рода Helminthosporium и оценивали по устойчивости к корневым гнилям, сетчатой и темно-бурой пятнистости с использованием методик и шкал М.Ф. Григорьева, Н.А. Родиной,
З.Г. Ефремовой, О.С. Афанасенко [13–15].
Структуру микроорганизмов семян изучали после выделения чистой культуры. Семена предварительно обеззараживали в 0,5 % KMnO4 в течение 20 минут с последующим промыванием дистиллированной водой. В стерильных условиях их раскладывали по 10 штук в чашки Петри на картофельно-глюкозный агар в
3-кратной повторности и помещали в термостат при температуре 23–25 °С. Через 5 суток просматривали и пересевали колонии, выросшие вокруг зерновок. Идентификацию микроорганизмов проводили на 14-й день после отсева мицелия, когда диагностические признаки микромицетов наиболее четко выражены. Применяли прямое микроскопирование (микроскоп «Биолам» с увеличением от 40 до 1600) и общеизвестную справочную литературу [16–18]. Частоту встречаемости рода оценивали по числу зерновок, из которых он изолирован, и выражали в процентах от общего количества инфицированных семян.
Для анализа фотосинтетических пигментов, в связи с микозным поражением листового аппарата и корневой системы растений, в фазу цветения отбирали среднюю пробу флаговых листьев. Объем выборки – 25 растений в
4-кратной повторности. Содержание пигментов (хлорофилл a – Chl a, хлорофилл b – Chl b, каротиноиды – Car) оценивали с использованием спектрофотометра UVmini-1240 (SHIMADZU Corporation, Japan) при длинах волн 470; 644,8; 661,6 нм. Выделение пигментов и расчет их содержания проводили по методике H.K. Lichtenthaler, C. Bushmann. В качестве экстрагента применяли 100 %-й ацетон. Содержание хлорофилла (Chl a, Chl b) в ССК (светособирающий комплекс) рассчитывали по формуле: ССК = 2,2 ∙ Chlb / (Chl a + Chl b) ∙ 100, где ССК – светособирающий комплекс Chl a; Chl a – содержание хлорофилла а в исследуемом образце, мг/г; Chl b – содержание хлорофилла b в исследуемом образце, мг/г [19].
Статистическую обработку данных проводили методами дисперсионного и корреляционного анализа с помощью пакета программ AGROS, версия 2.07, и пакета программ Microsoft Office Excel 2007.
Результаты и их обсуждение. Состояние климатических факторов в период вегетации растений во многом определяет уровень неспецифической устойчивости к болезням. Так, по данным С.С. Санина с соавт. [20], избыточное количество осадков, начиная с фазы выхода в трубку, является прогнозом усиления развития микозных пятнистостей листьев и колоса. Погодные условия в 2019–2021 гг. значительно отличались по уровню температуры и количеству осадков в наиболее важные периоды вегетации, о чем косвенным образом свидетельствует гидротермический коэффициент (ГТК). Уровень ГТК в межфазные период «посев–кущение» варьировал от 0,11 до 3,41, «всходы–колошение» – от 0,67 до 1,87, «колошение–созревание» – от 1,40 до 1,82.
Оценивая изучаемые сорта по болезнеустойчивости, следует отметить преобладание у них среднего уровня признака. Судя по максимальному развитию болезней в годы исследований, лишь два сорта (Дина и Форвард) характеризуются устойчивостью к сетчатой пятнистости и шесть (Эколог, Дина, Форсаж, Добряк, 288-12, 94-13) – к темно-бурой пятнистости; четыре сорта (Новичок, Тандем, 94-13, 52-12) проявляют умеренную устойчивость к корневым гнилям (табл. 1). В целом относительно лучшее иммунологическое состояние у сортов: Дина, Форвард, Добряк, 288-12, 52-12 и 94-13. Оценивая сорта по устойчивости к двум болезням, обусловленным паразитизмом одного вида Bipolaris soroкiniana, с использованием соответствующих шкал [13, 15], можно отметить, что новые линии характеризуются преимущественно умеренной (развитие болезни до 16 %) и средней (до 25 %) устойчивостью к корневым гнилям и слабой восприимчивостью (до 15 %) к темно-бурой пятнистости. Максимальное развитие болезней у ранее созданных сортов – 16,5–30,0 % (корневые гнили) и 11,0–21,0 % (темно-бурая пятнистость). По отношению к сетчатой пятнистости заметного улучшения у новых сортов и линий не наблюдается.
Таблица 1
Степень поражения гельминтоспориозными болезнями сортов ячменя
селекции ФАНЦ Северо-Востока, %
|
Сорт, линия |
Год внесения в Госреестр РФ |
Сетчатая пятнистость |
Темно-бурая пятнистость |
Корневые гнили |
|||
|
lim |
Х |
lim |
Х |
lim |
Х |
||
|
Белгородский 100 – станд. |
2010 |
10,3–16,8 |
13,2 |
10,0–12,0 |
11,0 |
16,5–24,0 |
18,8 |
|
Эколог |
1992 |
7,6–18,3 |
13,6 |
9,5–11,0 |
13,0 |
16,0–28,0 |
22,9 |
|
Дина |
1990 |
7,0–9,0 |
8,0 |
8,5–14,0 |
13,0 |
18,0–25,0 |
20,4 |
|
Андрей |
- |
13,5–20,5 |
17,0 |
9,0–16,5 |
14,5 |
14,0–18,5 |
16,6 |
|
Джин |
- |
14,8–20,0 |
16,0 |
12,0–18,0 |
14,0 |
17,2–30,0 |
25,0 |
|
Фермер |
- |
18,5–25,3 |
22,3 |
12,0–19,8 |
14,0 |
18,0–28,8 |
23,5 |
|
Новичок |
2002 |
13,5–45,0 |
19,8 |
11,0–21,0 |
15,0 |
12,8–16,9 |
14,6 |
|
Лель |
2005 |
14,8–23,5 |
16,0 |
9,0–20,0 |
15,0 |
15,0–25,0 |
21,8 |
|
Тандем |
2008 |
18,0–30,0 |
19,0 |
9,5–19,0 |
16,2 |
12,0–16,5 |
13,7 |
|
Родник Прикамья |
2010 |
16,5–26,0 |
18,5 |
10,0–25,0 |
16,0 |
10,6–23,5 |
18,6 |
|
Памяти Родиной |
2014 |
10,5–20,2 |
16,5 |
11,8–20,0 |
15,8 |
16,5–18,8 |
16,3 |
|
Форвард |
- |
8,8–15,0 |
11,0 |
14,0–17,0 |
16,0 |
12,5–26,7 |
20,1 |
|
Форсаж |
- |
9,5–18,0 |
15,0 |
9,8–15,5 |
13,0 |
16,5–19,8 |
18,4 |
|
Добряк |
- |
10,5–17,7 |
13,8 |
8,7–17,8 |
15,0 |
11,8–19,0 |
14,3 |
|
52-12 |
- |
10,2–20,0 |
16,0 |
11,1–17,7 |
15,5 |
14,5–17,5 |
15,0 |
|
288-12 |
- |
11,3–18,5 |
15,8 |
9,8–14,8 |
12,5 |
15,2–19,0 |
17,7 |
|
94-13 |
- |
10,0–23,2 |
19,0 |
8,0–15,0 |
11,0 |
11,0–15,8 |
13,8 |
Примечание: «-» сорта, линии, не внесенные в Государственный реестр РФ.
В ходе микробиологического анализа семян урожая 2021 г. выявлена в целом их высокая инфицированность, которая составила в среднем 58,5 % и изменялась внутри сортимента от 40 % (Фермер) до 100 % (Памяти Родиной) (рис.). В структуре микрофлоры идентифицировали 8 грибных таксонов: Bipolaris spp., Alternaria spp., Cladosporium spp., Stemphylium spp., Curvularia spp., Torula spp., Penicillium spp. и Fusarium spp. (F. sporotrichoides, F. oxysporum). Выявлена также бактериальная инфекция (Bacillus spp.) со средней частотой 8,0 %, варьируя от 1,0 % (94-13) до 18,0 % (Лель). Cообщества микроорганизмов были разделены на возбудителей болезней растений и семян ячменя (Bipolaris spp., Fusarium spp., Alternaria spp., Cladosporium spp. и Bacillus spp.) и сопутствующую микрофлору (Stemphylium spp., Curvularia spp., Torula spp., Penicillium spp.). В структуре фитопатогенов вид Bipolaris soroкiniana идентифицирован во всех образцах семян, за исключением сорта Дина, с частотой от 8,2 % (Андрей) до 71,0 % (Памяти Родиной) и средней долей 41,1 %.
Общая зараженность семян изучаемых сортов и линий ячменя, %
На втором месте по частоте встречаемости находятся виды Alternaria spp., изолированные из образцов семян 14 сортов со средней долей в контаминанте 30,8 % и варьированием от 10,5 % (Джин) до 53,0 % (Фермер, Форвард). Относительно небольшая частота фузариозной инфекции (в среднем 6,8 %) выявлена у 13 сортов ячменя. Микологи отмечают, что наиболее биологически опасны и токсичны большинство видов Fusarium spp. [21], Alternaria spp. и Bipolaris sorokiniana [22, 23], которые являются обильными представителями микобиоты растений и зерна ячменя.
Виды Cladosporium spp., среди которых C. herbarum – возбудитель оливковой плесени листьев и колоса, постоянно присутствуют в контаминанте семенной инфекции. С относительно большой долей они с выявлены у четырех сортов: Новичок (22,0 %), Форвард (17,2 %), 52-12 (15,2 %) и 94-13 (30,0 %). Среди сопутствующей микрофлоры наибольшая встречаемость у представителей микромицетов Torula spp. и Stemphylium spp., которые идентифицированы в 7 и 6 образцах семян с долей в контаминанте 10,0–32,5 и 9,0–20,0 % соответственно.
В патокомплексе изучаемых сортов выявлено от 3 (Эколог, Лель) до 6 (Джин, Андрей, Добряк, 288-12) микроорганизмов. Не установлено явной сортоспецифичности в изменениях микробиотических комплексов семян ячменя.
В результате корреляционного анализа выявлена слабая зависимость (r) между инфицированностью семян ячменя и развитием корневых гнилей (r = 0,24), темно-бурой и сетчатой пятнистостью (r = 0,25 и 0,16). В связи с паразитизмом одного вида Bipolaris sorokiniana установлена также достоверная связь (при Р ≥ 0,95) между развитием корневых гнилей и темно-бурой пятнистости листьев (r = 0,56).
Вследствие неблагоприятных факторов среды, в т.ч. и паразитизма видов Helminthosporium spp., происходит преждевременное усыхание листьев и общее старение растений, что отражается на их продуктивности, поскольку более 70 % азота поступает из стареющих листьев [24]. В условиях 2021 г. мы проанализировали влияние грибной инфекции на состояние пигментного комплекса у изучаемых сортов ячменя (табл. 2). Содержание Chl а в листьях изменялось на 24,3 %, т.е. от 9,87 мг/г (сорт Андрей) сухой массы до 13,03 мг/г (линия 94-13), Chl b – на 21,0 %, от 6,48 мг/г (сорт Белгородский 100) до 8,20 мг/г (линия 94-13), Car – на 28,1 %, от 2,08 мг/г (сорт Андрей) до 2,89 мг/г (линия 94-13). Наиболее высокие параметры фотосинтетического аппарата выявлены у перспективной линии 94-13, которая характеризуется повышенной устойчивостью к гельминтоспориозным болезням; относительно низкие – у восприимчивого сорта Андрей. Известно, что недостаток Chl b негативно влияет на смену этапов онтогенеза у ячменя и приводит к ускоренному старению растений, а его сверхпродукция замедляет этот процесс [8]. В наших исследованиях наиболее низкие показатели Chl b у стандартного сорта Белгородский 100, высокие – у линии 94-13.
Таблица 2
Содержание пигментов в листьях ярового ячменя, мг/г сухой массы
|
Сорт, линия |
Хлорофилл а |
Хлорофилл b |
Каротиноиды |
Соотношение хлорофиллов a/b |
Соотношение суммы хлорофиллов / каротиноидов |
|
Белгородский 100 |
10,97 сd |
6,48 a |
2,58 efg |
1,69 hij |
6,83 b |
|
Эколог |
11,84 ghi |
6,89 abcd |
2,70 gh |
1,72 j |
6,92 bc |
|
Дина |
10,17 ab |
7,32 defg |
2,12 a |
1,39 ab |
8,31 c |
|
Андрей |
9,87 a |
7,32 defg |
2,08 a |
1,35 a |
8,25 bc |
|
Джин |
10,96 cd |
6,63 a |
2,51 def |
1,69 hij |
7,12 a |
|
Фермер |
12,67 jk |
7,80 fgh |
2,87 ij |
1,63 fghij |
7,14 bc |
|
Новичок |
11,63 defgh |
7,33 defg |
2,62 fg |
1,59 defgh |
7,24 bc |
|
Лель |
12,42 ijk |
7,21 bcdef |
2,83 hij |
1,72 ij |
6,95 bc |
|
Тандем |
11,82 fghi |
7,33 defg |
2,53 efg |
1,62 fghij |
7,57 bc |
|
Родник Прикамья |
11,08 cde |
6,75 abc |
2,49 def |
1,65 ghij |
7,16 bc |
|
Памяти Родиной |
11,69 efgh |
7,23 cdef |
2,58 efg |
1,62 fghij |
7,35 bc |
|
Форвард |
11,10 cde |
7,55 efg |
2,43 cde |
1,47 bc |
7,70 bc |
|
Форсаж |
12,00 hi |
7,88 gh |
2,62 fg |
1,52 cdef |
7,60 bc |
|
Добряк |
10,53 bc |
6,82 abcd |
2,30 bc |
1,54 cdefg |
7,53 bc |
|
52-12 |
11,47 defgh |
7,71 fgh |
2,47 cdef |
1,49 bcde |
7,76 bc |
|
288-12 |
11,08 cde |
7,57 fg |
2,34 cd |
1,46 bc |
7,98 bc |
|
94-13 |
13,03 k |
8,20 h |
2,89 j |
1,59 efgh |
7,35 bc |
Примечание: в каждом столбце варианты, сопровождаемые одинаковыми латинскими буквами, не отличаются статистически по критерию Дункана при р ≤ 0,05.
Корреляционный анализ показал неоднозначное действие грибных болезней на содержание фотосинтетических пигментов. Отрицательная зависимость установлена между развитием темно-бурой пятнистости и содержанием Chl а (r = -0,134) и Car (r = -0,217); сетчатой пятнистости и совокупностью Chl а и Chl b в ССК (r = -0,439); корневых гнилей и Chl а (r = -0,325), Chl b (r = -0,316) и Car (r = -0,371). Более сильные взаимосвязи пигментов в связи с развитием корневых гнилей обусловлены негативным влиянием почвенной инфекции на общий гомеостаз растений, что снижает накопление зеленой биомассы и продукции пигментов.
Заключение. В результате исследований районированные сорта и перспективные линии ячменя селекции ФАНЦ Северо-Востока охарактеризованы по иммунологическому состоянию растений и семян. В ходе 30-летнего цикла селекционной работы произошло некоторое улучшение линий по отношению к корневым гнилям и темно-бурой пятнистости листьев, но нет прогресса по повышению устойчивости к сетчатой пятнистости. В целом лучшее иммунологическое состояние у трех сортов (Дина, Форвард, Добряк) и трех линий (288-12, 52-12, 94-13). Между инфицированностью семян и развитием болезней зависимость слабая (r = 0,16–0,25); развитием корневых гнилей и темно-бурой пятнистости листьев достоверная (при Р ≥ 0,95) средней степени (r = 0,56). Связь между содержанием фотосинтетических пигментов и развитием болезней разнонаправленная и преимущественно слабая. В наибольшей степени негативное влияние на содержание пигментов связано с корневой инфекцией (Chl а: r = -0,325; Chl b: r = -0,316; Car – r = -0,371), что может быть индуцировано ранним увяданием растений и отмиранием листьев из-за поражения корневой системы растений.
1. Anis'kov N.I. i dr. Ocenka adaptivnoy sposobnosti sortov yarovogo yachmenya selekcii SibNIISH v usloviyah Sibirskogo Priirtysh'ya // Vestnik OmGAU. 2016. № 4 (24). S. 5–9.
2. Batalova G.A. Selekciya zernovyh kul'tur na immunitet na severo-vostoke evropeyskoy territorii Rossii // Zernovoe hozyaystvo Rossii. 2017. № 3. S. 8–11.
3. Schennikova I.N., Kokina L.P. Perspektivy selekcii yachmenya dlya usloviy Volgo-Vyatskogo regiona (analiticheskiy obzor) // Agrarnaya nauka Evro-Severo-Vostoka. 2021. № 22(1). S. 21–31. DOI:https://doi.org/10.30766/2072-9081.2021.22.1.21-31.
4. Sheshegova T.K. i dr. Istochniki ustoychivosti yarovogo yachmenya k gel'mintosporioznym boleznyam i ih ispol'zovanie v selekcii // Agrarnaya nauka Evro-Severo-Vostoka. 2016. № 54. S. 9–14. DOI:https://doi.org/10.30766/2072-9081.2016.54.5.09-14.
5. Sheshegova T.K. i dr. Zavisimost' gribnoy infekcii zernovyh kul'tur ot sezonnoy dinamiki klimaticheskih faktorov // Dostizheniya nauki i tehniki APK. 2017. T. 31. № 4. S. 58–62.
6. Zaharenko V.A., Vasyutin A.S. Fitosanitarnye riski v zernovom proizvodstve // Zaschita i karantin rasteniy. 2014. № 7. S. 3–7.
7. Ivanov L. A. i dr. Izmenenie soderzhaniya hlorofillov i karotinoidov v list'yah stepnyh rasteniy vdol' shirotnogo gradienta na Yuzhnom Urale // Fiziologiya rasteniy. 2013. T. 60. S. 856–864.
8. Kimm H., Guan K., Jiang C., Miao G., Wu G., Suyker A.E., Ainsworth E.A., Bernacchi C.J., Montes C.M., Berry J.A., Yang X., Frankenberg C., Chen M., Kӧhler P. A physiological signal derived from sun-induced chlorophyll fluorescence quantifies crop physiological response to environmental stresses in the U.S. Corn Belt // Environ. Res. Lett. 2021. 16. 124051. DOI.https://doi.org/10.1088/1748-9326/ac3b16.
9. Furbank R.T., Quick W.P., Sirault X.R.R. Improving photosynthesis and yield potentisl in cereal crops by targeten genetic manipulation: progress and challenges. Fild. Crop. Res. 2015. Vol. 182. pp. 19–29. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fcr.2015.04.009.
10. Hisamova K.Ch., Yashin E.A., Kulikova A.H. Formirovanie posevov i urozhaya yachmenya v zavisimosti ot primeneniya v sisteme udobreniya solomy i biologicheskogo preparata Baykal EM-1 // Vestnik Ul'yanovskoy gosudarstvennoy sel'skohozyaystvennoy akademii. 2016. № 2 (34). S. 65–73. DOI:https://doi.org/10.18286/1816-4501-2016-2-65-73.
11. Mokronosov A.T. Fotosinteticheskaya funkciya i celostnost' rastitel'nogo organizma // 42-e Timiryazevskoe chtenie. M.: Nauka, 1983. 64 s.
12. Kolomeychenko V.V., Bedenko V.P. Teoriya produkcionnogo processa rasteniy i fitocenozov // Vestnik Orlovskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. 2008. № 4 (13). S. 17–21.
13. Grigor'ev M.F. Metodicheskie ukazaniya po izucheniyu ustoychivosti zernovyh kul'tur k kornevym gnilyam. L.: VIR, 1976. 60 s.
14. Rodina N.A., Efremova Z.G. Metodicheskie rekomendacii po selekcii yachmenya na ustoychivost' k boleznyam i ih primenenie v NIISH Severo-Vostoka. M., 1986. 79 s.
15. Afanasenko O.S. Ustoychivost' yachmenya k gemibiotrofnym patogenam // Identificirovannyy genofond rasteniy i selekciya. SPb.: VIR, 2005. S. 592–609.
16. Bilay V.I. Fuzarii. Kiev: Naukova dumka, 1977. 442 s.
17. Pidoplichko N.M. Griby – parazity kul'turnyh rasteniy // Opredelitel'. Minsk, 1977. T. 2. 299 s.
18. Hasanov B.A. Opredelitel' gribov – vozbuditeley «gel'mintosporiozov» rasteniy iz rodov Bipolaris, Drechslera, Exserohilum. Tashkent, 1992. 232 s.
19. Lichtenthaler H.K., Bushmann C. Chlorophylls and carotenoids: measurement and characterization by UV-VIS spectroscopy // Current protocols in food analytical chemistry. 2001. F.4.3.1-F.4.3.8. DOI:https://doi.org/10.1002/0471142913.faf0403s01.
20. Sanin S.S., Korneva L.G., Polyakov T.M. Prognoz riska razvitiya epifitotiy septorioza list'ev i kolosa pshenicy // Zaschita i karantin rasteniy. 2015. № 3. S. 33–36.
21. Gavrilova O.P. i dr. Sovmestnaya vstrechaemost' metabolitov gribov Alternaria i Fusarium, associirovannyh s zernovymi kul'turami // Rossiyskaya sel'skohozyaystvennaya nauka. 2020. № 6. S. 20–23.
22. Orina A.S. i dr. Simbioticheskie vzaimootnosheniya gribov roda Fusarium i Alternaria, koloniziruyuschih zerno ovsa // Sel'skohozyaystvennaya biologiya. 2017. T. 52. № 5. S. 986–994.
23. Orina A.S. i dr. Mikromicety Altermaria spp. i Bipolaris sorokiniana i mikotoksiny v zerne, vyraschennom v Ural'skom federal'nom okruge // Mikologiya i fitopatologiya. 2020. T. 54. № 5. S. 365–377.
24. Ospina L.A., Clément G., Masclaux-Daubresse C. Metabolite profiling for leaf Senescence in barley reveals decreases in amino acids and glycolysis intermediates // Agronomy. 2017. 7 (15). DOIhttps://doi.org/10.3390/agronomy7010015.
