Россия
Цель исследования – оценка влияния энтеросорбента при включении его в протокол стандартной терапии маститов у коров на биохимические показатели крови. Было сформировано три группы коров с аналогичной патологией: контрольная (стандартная терапия) и две опытных. Кровь получали в утренние часы до кормления, сыворотку исследовали на биохимических анализаторах. Стандартная терапия включала введение суспензии «Гамарет» через сосковый канал и подкожно 10 % раствор препарата «Марбофлоцина» 1 раз в сутки в течение 5 дней. Опытные 2-я и 3-я группы получали перорально энтеросорбент на основе полиметилсилоксана полигидрата в дозе 0,2 и 0,5 мг/кг живой массы соответственно. Препарат вводили спустя 2 ч после последнего кормления. До лечения у коров отмечена гипергликемия, гиперпротеинемия, снижение белкового коэффициента, повышенная активность щелочной фосфатазы. Стандартная терапия привела к недостоверному изменению общего белка и белковых фракций, креатинина и общего билирубина, повышению мочевины, снижению глюкозы и прямого билирубина. Во 2-й и 3-й группах выявлено снижение холестерола, прямого билирубина, общего белка, повышение альбумин-глобулинового коэффициента, что сопровождалось снижением активности щелочной фосфатазы. У коров 2-й группы отмечено повышение АСТ и тенденция к снижению АЛТ, в 3-й группе – недостоверное изменение АСТ и снижение АЛТ. Установлено, что наиболее эффективно вводить энтеросорбент в дозе 0,5 мг/кг живой массы спустя 2 ч после кормления. Данная доза способствует снижению общего белка на 8,23 %; прямого билирубина – на 71,28; глюкозы – на 66,81; холестерола – на 31,08; АЛТ – на 18,57; щелочной фосфатазы – на 66,70 % и повышению альбумин-глобулинового коэффициента до 0,89.
коровы, мастит, энтеросорбент, биохимия крови.
Введение. Маститы встречаются как у высокопродуктивных, так и низкопродуктивных животных, как в период лактации, так и в сухостойный период независимо от времени года [1]. Воспаление молочной железы является широко распространенным заболеванием на молочных комплексах и фермах, причем заболеваемость в некоторых стадах может достигать 35–60 %, и за год может переболеть до 60–75 % коров стада [2]. Причиной возникновения мастита у коров могут быть различные факторы, действие которых обычно проявляется в сочетании с многочисленными предрасполагающими к заболеванию условиями. Воспаление, как правило, возникает на фоне иммунодефицитного состояния как организма, так и локального иммунитета молочной железы [3]. Высокая восприимчивость к маститам первоначально обусловлена интенсивно протекающими метаболическими процессами в тканях вымени коровы [4]. Клинически мастит проявляется лишь в 25 % случаев, гораздо чаще болезнь протекает субклинически [5]. Поэтому мастит в молочном животноводстве представляет собой не только зооветеринарные, но и социально-экономи-ческие проблемы [6].
Бактериальная контаминация молочной железы коров на сегодняшний день является наиболее актуальной проблемой [7]. Микрофлора в молочную железу может попадать разными путями: галактогенным – через сосковый канал, гематогенным и лимфогенным путями. Приоритетную роль играет галактогенный путь, при котором возбудители проникают из внешней среды через сосковый канал [8].
При маститах выделяют как монокультуры, так и ассоциации микроорганизмов, таких как стрептококки – Streptococcus agalactiae, Strepto-coccus dysgalactiae, Streptococcus pyogenes, Streptococcus uberis; стафилококки – Staphylo-coccus pyogenes, Staphylococcus aureus, Staphylococcus sciuri, Staphylococcus albus, a также энтеробактерии Escherichia coli, Klebsiella, Proteus и синегнойную палочку – Pseudomonas aeruginosa [9].
Для определения времени, характера и причины заболевания молочной железы необходимо тщательно собрать анамнез, провести клиническое исследование животного, его молочной железы и проверить качество молока [10]. Но этого недостаточно для эффективного лечения, так как микробная атака на организм коров приводит к морфологическим изменениям в тканях молочной железы, нарушению гомеостаза и иммунологических реакций, снижению резистентности и стресс-устойчивости [11]. В связи с этим возникает необходимость оценки биохимических показателей крови [12].
Цель исследования: оценка интеграции энтеросорбента в схему лечения мастита у коров.
Объект, материал и методы исследования. Исследование выполнено на кафедре акушерства, хирургии и незаразных болезней животных в 2021 г. Объектом послужили коровы среднего возраста 3,7 лет, голштино-фризской породы, страдающие клиническим маститом в течение первой трети лактации. Группы коров сформированы с аналогичными симптомами и гнойно-катаральной формой подострого течения заболевания, у которых мастит диагностирован в соответствии с современной классификацией, учитывающей контагиозность возбудителей [13]. Материалом исследования послужила сыворотка крови. Кровь получали из подхвостовой вены в утренние часы до кормления животных.
Определение биохимических показателей крови осуществляли на полуавтоматическом биохимическом анализаторе Bio Chem BA (High Technology Inc., США) до начала и после окончания терапии, математическую обработку выполняли с помощью стандартного пакета программ Microsoft Excel-2010.
Было сформировано три группы коров с ана-логичной патологией (табл. 1).
Таблица 1
Схема проведения исследования
|
Группа животных |
Проводимые лечебные мероприятия |
|
1-я группа – контрольная, n = 10 |
Стандартная терапия |
|
2-я группа – опытная, n = 8 |
СТ + 0,2 мг/кг живой массы ПМС ПГ |
|
3-я группа – опытная, n = 10 |
СТ + 0,5 мг/кг живой массы ПМС ПГ |
Лечение контрольной группы осуществляли согласно стандартной терапии (СТ), разработанной в хозяйстве. Антибиотикотерапия обусловлена и подобрана в соответствии с результатами антибиотикограммы и микробиоценоза в данном хозяйстве. Больным коровам вводили интрамаммарную суспензию «Гамарет» 10 мл и подкожно 10 % раствор «Марбофлоцина» в дозе 15 мл один раз в сутки в течение 5 дней.
Опытным 2-й и 3-й группам на фоне стандартной терапии перорально вводили взвесь энтеросорбента на основе полиметилсилоксана полигидрата (ПМС ПГ) спустя 2 ч после последнего кормления.
Данный препарат обладает способностью прочно связывать и выводить патогены и высокомолекулярные токсичные вещества, снижая риски физиологической эндотоксинемии, кроме того, способствует заселению кишечника резидентной микрофлорой [14], улучшает переваривающую способность [15], нормализует ферментативную активность [16].
С учетом технологии (тип «Карусель») доение больных коров осуществлялось в последнюю очередь в отдельные емкости с последующим обеззараживанием и утилизацией молока. Доильное оборудование подвергалось полному циклу промывки и обеззараживания с использованием сертифицированных моюще-дезинфи-цирующих средств Circo Power AFM и Circo Power SFM (GEA Farm Technologies, Германия). Программа промывки автоматическая, где учет результатов ведется в программе контроля животноводческим комплексом Dairy Plan.
Результаты исследования и их обсуждение. У коров, страдающих маститом, до начала лечения установлена гиперпротеинемия, уровень общего белка превышал верхнюю границу нормы (60–85 г/л) более чем на 22,00 % [16], при этом альбумин-глобулиновый коэффициент варьировал от 0,56 до 0,71 (табл. 2).
Анализ содержания мочевины у коров в сыворотке крови выявил ее снижение на 19,4–25,5 % относительно референсной величины (3,3–3,6 ммоль/л) [17], что, вероятно, обусловлено нарушением метаболической активности в печени и высоким содержанием белка в рационе.
На фоне проведенного лечения в контрольной группе отмечено недостоверное повышение общего белка и белковых фракций, креатинина и общего билирубина. Отмечается повышение концентрации мочевины на 19,10 % и снижение прямого билирубина на 65,22 % (р ≤ 0,05), что свидетельствует об улучшении барьерной фун-кции печени.
В опытных 2-й и 3-й группах установлено снижение концентрации общего белка на 8,53 и 8,23 % и повышение альбумин-глобулинового коэффициента до 0,81 и 0,89 соответственно. В опытных группах наметилась тенденция к снижению общего билирубина и достоверное снижение прямого билирубина (на 49,39–71,28 %). Так же, как и в контрольной группе, отмечается повышение концентрации мочевины и снижение креатинина, что свидетельствует об улучшении концентрационной функции почек и печени.
Таблица 2
Динамика азотистого обмена у коров, M±m
|
Показатель |
1-я группа (n = 10) |
2-я группа (n = 8) |
3-я группа (n = 10) |
|
До начала лечения |
|||
|
Общий белок, г/л |
104,53±1,26 |
103,88±0,92 |
104,35±1,02 |
|
Альбумин, г/л |
37,81±0,25 |
43,05±0,16 |
39,21±0,09 |
|
Глобулины, г/л |
67,43±0,77 |
60,83±0,48 |
65,14±0,06 |
|
Креатинин, мкмоль/л |
94,06±1,08 |
95,32±0,18 |
98,91±0,36 |
|
Мочевина, ммоль/л |
2,46±0,20 |
2,47±0,06 |
2,66±0,22 |
|
Общий билирубин, мкмоль/л |
6,80±0,50 |
8,25±0,62 |
6,90±0,19 |
|
Прямой билирубин, мкмоль/л |
1,15±0,65 |
0,83±0,01 |
1,95±0,05 |
|
После лечения |
|||
|
Общий белок, г/л |
109,10±1,10 |
95,02±1,57 |
95,76±1,66 |
|
Альбумин, г/л |
39,41±0,36 |
38,13±0,18 |
40,38±0,22 |
|
Глобулины, г/л |
70,43±0,87 |
46,89±0,87 |
45,38±0,43 |
|
Креатинин, мкмоль/л |
97,11±1,08 |
88,74±1,44 |
88,85±1,47 |
|
Мочевина, ммоль/л |
2,93±0,12 |
2,56±0,05 |
2,92±0,04 |
|
Общий билирубин, мкмоль/л |
7,00±0,20 |
6,35±0,35 |
6,80±0,40 |
|
Прямой билирубин, мкмоль/л |
0,40±0,02 |
0,42±0,19 |
0,56±0,03 |
У больных маститом коров концентрация глюкозы в сыворотке крови превышала референс-диапазон (2,50–3,88 ммоль/л) на 160,3–195,1 % [16], что связано с выраженной болезненностью и выбросом кортизола в кровь (табл. 3). У коров 3 групп отмечается повышенное содержание холестерола по сравнению с нормой (2,06–4,00 ммоль/л) на 13,50 % (р ≤ 0,05) [16].
После проведенного лечения концентрация глюкозы у животных снизилась и достигла физиологической величины. У коров 2-й и 3-й групп отмечено также снижение холестерола на 8,16 и 31,06 % соответственно (р ≤ 0,05). Выраженное, достоверное снижение триглицеридов произошло у коров контрольной группы (на 23,52 %).
Таблица 3
Динамика энергетического обмена у коров, M±m
|
Показатель, ммоль/л |
1-я группа n = 10 |
2-я группа n = 8 |
3-я группа n = 10 |
|
До начала лечения |
|||
|
Глюкоза |
10,10±0,90 |
10,15±0,85 |
11,45±0,95 |
|
Холестерол |
3,73±0,17 |
3,92±0,40 |
4,54±0,03 |
|
Триглицериды |
0,17±0,04 |
0,16±0,03 |
0,16±0,03 |
|
После лечения |
|||
|
Глюкоза |
3,90±0,50 |
3,40±0,405 |
3,80±0,05 |
|
Холестерол |
3,69±0,26 |
3,60±0,32 |
3,31±0,09 |
|
Триглицериды |
0,13±0,01 |
0,14±0,01 |
0,15±0,01 |
У коров, страдающих маститом, повышена активность щелочной фосфатазы до 120,20–179,10 Ед/л, после проведенного лечения ее активность к контрольной группе достигла 198,35±9,55 Ед/л, что является следствием нарушения обмена веществ. В опытных группах, напротив, активность фермента снизилась до 59,90–98,80 Ед/л, что свидетельствует об улучшении обменных процессов.
Большое значение для оценки функции печени имеют трансаминазы.
У коров до начала лечения активность аспартатаминотрасферазы (АСТ) находилась в пределах 15,60–22,78 Ед/л, аланинаминотрансферазы (АЛТ) – 69,11–72,80 Ед/л (рис.).
На фоне стандартной терапии у коров 1-й группы отмечено повышение активности АСТ на 73,22 % (р ≤ 0,05) и недостоверное снижение АЛТ.
В опытных группах также выявлено изменение активности трансаминаз. В частности у коров 2-й группы также наблюдалось повышение активности АСТ на 106,02 % (р ≤ 0,05) и тенденция к снижению АЛТ. В 3-й группе установлено недостоверное изменение активности АСТ и снижение АЛТ на 18,37 % (р ≤ 0,05).
Динамика активности трансаминаз у коров
Анализ полученных данных свидетельствует о том, что в хозяйстве на фоне высококонцентратного типа кормления у коров наблюдается гиперпротеинемия, что может привести к метаболическим нарушениям, таким как кетоз и жировой гепатоз. Воспаление молочной железы сопровождалось смещением белкового коэффициента с преобладанием глобулиновой фракции и гипергликемией, обусловленной поступлением гормона стресса на фоне выраженной болевой реакции.
Комплекс антибиотиков (новобиоцин, неомицин, прокаин пенициллина, дигидрострептомицин), входящих в состав суспензии «Гамарет», как известно, оказывает бактерицидное действие в отношении наиболее часто выделяемых при маститах грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов: Staphylococcus, Streptococcus, Corynebacterium и Escherichia, фторхинолоновый препарат «Марбофлоцин» также подавляет размножение указанных возбудителей, что является весьма эффективным средством при лечении маститов. Однако стандартная терапия не предусматривает использование препаратов для повышения резистентности, улучшения метаболических процессов, снятия симптомов интоксикации и выведения промежуточных метаболитов, о чем свидетельствуют результаты биохимического исследования крови (повышение общего белка, щелочной фосфатазы, АСТ и др.).
Применение лишь энтеросорбента на основе полиметилсилоксана полигидрата способствовало снижению концентрации общего белка и холестерола и улучшению метаболических процессов в печени, о чем свидетельствует альбумин-глобулиновое соотношение и снижение активности щелочной фосфатазы.
Выводы. На основании данных, полученных в результате исследования биохимических показателей сыворотки крови у коров, больных маститом и получивших кроме стандартной терапии взвесь энтеросорбента на основе полиметилсилоксана полигидрата, можем отметить, что наиболее эффективно вводить препарат в дозе 0,5 мг/кг живой массы спустя 2 ч после кормления. Данная доза способствует снижению общего белка на 8,23 %; прямого билирубина – на 71,28 %; глюкозы – на 66,81; холестерола – на 31,08; АЛТ – на 18,57 и щелочной фосфатаза – на 66,70 % и повышению альбумин-глобулинового коэффициента до 0,89.
1. Кушнiр I.М., Мурська С.Д. Проблеми захворювань молочної залози та перспективи розробки нових протимаститних препараiв // Науковий вісник Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького. 2017. Т. 19, № 82. С. 93–96.
2. Комаров В.Ю., Белкин Б.Л., Андреев В.Б. Эффективность применения препарата «Сухостин» для лечения мастита у коров в сухостойный период // Вестник ОрелГАУ. 2017. № 3. С. 100–103.
3. Ашенбреннер А.И., Хаперский Ю.А., Чекункова Ю.А. и др. Терапевтическая эффективность препарата «Экомаст» при остром лактационном мастите у коров // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2018. № 6. С. 42–46.
4. Малашко В.В., Башура А.В. Гистологические изменения в молочной железе коров при гнойном мастите // Сельское хозяйство – проблемы и перспективы: сб. науч. тр. / Гродненский гос. аграр. ун-т. Гродно, 2012. Т. 19. Ветеринария. С. 78–83.
5. Любимов В.Е., Кирсанов В.В., Цой Ю.А. Механизация лечения и профилактики мастита у коров на молочных фермах // Вестник Всероссийского научно-исследовательского института механизации животноводства. 2017. № 4. С. 104–107.
6. Кашин А.С. Импеданс маститного молока и эффективность гомеапатического средства при лечении коров, больных маститами // Вестник КрасГАУ. 2009. № 2. С. 125–129.
7. Талипов Р.А., Лоренгель Т.И., Потий К.В. Лечение острого мастита у коров с применением бактериофагов // Вестник Омского ГАУ. 2018. № 3. С. 62–68.
8. Паневник В.В., Супрович Т.М. Етioлогiчнi чиники маститiв корiв української чорно-рябої молочної породи // Науковий вісник Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького. 2016. Т. 18, № 3. С. 90–96.
9. Пименов Н.В., Глазунов Е.А., Сотникова Л.Ф. и др. Изучение профилактической и лечебной эффективности препарата бактериофагов при маститах у коров в условиях молочно-товарной фермы // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. 2016. № 5. С. 90–96.
10. Курманов А.К., Исинтаев Т.И., Исаков Е.Б. Основные принципы диагностики маститов // Вестник Всероссийского научно-исследова-тельского института механизации животноводства. 2013. № 3. С. 88–92.
11. Сулейманов С.М., Павленко О.Б., Мироно-ва Л.П. и др. Морфология молочной железы и клеточный состав молока у здоровых коров в период лактации // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2017. № 3. С. 44–49.
12. Невинская Н.А., Булгаков A.М., Королев B.В. Биохимический и морфологический статус крови при лечении скрытых маститов у коров // Вестник Алтайского ГАУ. 2007. № 4. С. 38–48.
13. Медведский В.А., Мазоло Н.В. Гигиенические мероприятия по профилактике маститов у коров. Витебск: Изд-во ВГАВМ, 2018. 20 с.
14. Турков В.Г., Клетикова Л.В., Якименко Н.Н. и др. Динамика микрофлоры у телят в раннем постэмбриональном онтогенезе на фоне применения биологически активных веществ и энтеросорбента // Аграрный вестник Верхневолжья. 2020. № 2. С. 57–62.
15. Маннова М.С., Клетикова Л.В., Якименко Н.Н. и др. Динамика некоторых показателей сыворотки крови при нарушениях пищеварения у телят в раннем послеродовом периоде // Развитие агропромышленного комплекса в условиях роботизации и цифровизации производства в России и за рубежом: мат-лы междунар. науч.-практ. конф. (DAIC 2020)(Екатеринбург, 15–16 октября 2020 г.). Екатеринбург, 2020. Т. 220. Артикул № 02026 (E3S Web of Conferences 222, 0 (2020) DAIC 2020).
16. Маннова М.С., Якименко Н.Н., Шишкина Н.П. и др. Динамика копрологических показателей у клинически здоровых телят в период новорожденности // Современная научная мысль: мат-лы VI Всерос. науч.-практ. конф. (Чувашская Республика, Чебоксары, 5 февраля 2020 г.). Чебоксары, 2020. С. 233–240.
17. Васильева С.В., Конопатов Ю.В. Клиническая биохимия крупного рогатого скота: учеб. пособие. 2-е изд., испр. СПб.: Лань, 2017. 188 с.
