С помощью методики выявления областей ядрышковых организаторов (AgЯО) нитратом серебра изучены параметры AgЯО в клетках почечных канальцев после частичной нефрэк-томии с использованием для ушивания опера-ционной раны почки нитей «Аллоплант». Ис- следования показали, что AgЯО в ядрах кле-ток почечных канальцев кроликов имеют ок-руглую или близкую к ней форму, а количество AgЯО находится в пределах от одного до че-тырех. Установлено, что наибольшее количе-ство AgЯО в ядрах клеток почечных канальцев выявлено на третьи сутки в зоне, близкой к рубцу (2.73±0.08), а наименьшее - на двена-дцатые сутки вдали от рубца (1.80±0.04). Максимальное повышение суммарной площади AgЯО зафиксировано на третьи сутки в зоне повреждения (4.76±0.18 мкм2) и вдали от нее (2.85±0.09 мкм2), затем происходит снижение этого параметра в зоне близкой к рубцу к пятнадцатым суткам (2.93±0.10 мкм2), а вда-ли от нее - к двенадцатым суткам (2.04±0.07 мкм2). На восемнадцатые и шестидесятые сутки значения данного параметра приближа-ются к дооперационным, как в зоне, близкой к операционному рубцу, так и удаленной от не-го. Полученные нами данные по динамике из-менения количества AgЯО в ядрах клеток по-чечных канальцев после частичной нефрэкто-мии совпадают с динамикой изменения сум-марной площади AgЯО. Результаты исследо-ваний свидетельствуют о том, что при ис-пользовании нитей «Аллоплант» для ушива-ния операционной раны почки после выполне-ния нефрэктомии в почечных канальцах на-блюдается изменение количества и суммарной площади AgЯО в зависимости от близости к операционному рубцу, что по нашему мнению, отражает различный пролиферативный по-тенциал клеток почечных канальцев и со-стояние клеточной дифференцировки.
кролики, почки, почечные канальцы, ядрышковые организаторы, рибо-сомальная РНК, аллоплант, регенерация
1. Активация ядрышковых организаторов при культивировании мышиных эмбриональных стволовых клеток линии RL in vitro / Э.Р. Кунафина [и др.] // Онтогенез. - 2005. - № 36 (2). - С. 102-109.
2. Аргирофильные белки областей ядрышко-вых организаторов - маркеры скорости клеточной пролиферации / Н.Т. Райхлин [и др.] // Архив патологии. - 2006. - T. 68, № 3. - C. 47-51.
3. Демин С.Ю., Стефанова В.Н. Дифферен-циация интерфазных ядрыш-ковых органи-заторов в клетках эмбрио-нальной почки свиньи (линия СПЭВ) // Цитология. - 2006. - Т. 48, № 4. - С. 320-331.
4. Елисеев В.Г., Афанасьев Ю.И., Юрина Н.А. Гистология. - М.: Медицина, 1983. - 590 с.
5. Жарская О.О., Зацепина О.В. Динамика и механизмы реорганизации ядрышка в ми-тозе // Цитология. - 2007. - Том 49. - № 5. - С. 355-369.
6. Крокер Джен. Районы ядрышкового органи-затора и фибриллярные центры. Молеку-лярная клиническая диагностика (методы) / под ред. С. Херрингстона и Дж. Макги. - М.: Мир, 1999. - С. 260-279.
7. Мамаев Н.Н., Мамаева С.Е. Структура и функция ядрышкообразующих районов хро-мосом: молекулярные, цитологические и клинические аспекты // Цитология. - 1992. - Т. 34, № 10. - С. 3-25.
8. Минина В.И., Савченко Я.А., Ахматьянова В.Р. Влияние производственной среды на функциональную активность генов рДНК у рабочих салаирского горно-обогатитель-ного комбината // Современные проблемы науки и образования. - 2006. - № 3. - С. 105.
9. Поликар А. Элементы физиологии клетки. - Л.: Наука, 1976. - 389 с.
10. Робертис Э., Новинский В., Саэс Ф. Биоло-гия клетки. - М.: Мир, 1973. - 488 с.
11. Сабанеева Е.В. Специфичность окрашивания ядрышковых организаторов азотнокислым серебром // Цитология. - 1989. - Т. 31. - № 1. - С. 5-13.
12. Ташкэ К. Введение в количественную цито-гистологическую морфологию / Академия социалистической республики Румынии. - Бухарест, 1980. - 192 с.
13. Ченцов Ю.С. Введение в клеточную биоло-гию. - Изд. 4-е, перераб. и доп. - М.: Ака-демкнига, 2004. - 495 с.
14. Юрко А.С., Кавцевич Н.Н. Районы органи-заторов ядрышка лимфоцитов грен-ландских тюленей (Pagophilus groenlandicus Erxleben, 1777) разного возраста // Морские млекопитающие Голарктики. - 2006. - С. 576-580.
15. Acta Neuropathol / Mc A.M. Nicol [et al.]. -1989. - V. 77, № 5. - P. 547-549.
16. Bauer NB, Zervos D, Moritz A. Argyrophilic nucleolar organizing regions and Ki67 equally reflect proliferation in fine needle aspirates of normal, hyperplastic, inflamed, and neoplastic canine lymph nodes (n = 101) // Journal of veterinary internal medicine (American college of Veterinary Internal Medicine). - 2007. - № 21 (5). - 928. - P. 35.
17. Cooper G.M. The Cell. A Molecular approach / 2nd ed. Sunderland (MA): Sinauer Associates, 2000. - 625 p.
18. Hernandez-Verdun D. The Nucleolus Today // J. Cell. Sci. - 1991. - V. 99. - P. 465-471.
19. Howell M., Black D.A. Controlled silverstaining of nucleolus organiser regions with a protec-tive colloidal developer. A 1-stepmethod // Experientia. - 1980. - № 36. - P. 1014-1015.
20. Nucleolar size indicates rapidity of cell prolif-eration in cancer tissues / M. Derenzini [et al.]. - 2000. Jun; 191 (2) 181-6.
21. Olson M.O.J. The role of proteins in Nucleolar Structure and function. In the eukariotic nucle-us. Molecular biochemistry and macromolecu-lar assemblies // V.2. Edited by Strauss P.R., Wilson S.H. Caldwell: The Telford Press. - 1990. - P. 519-559.
22. Sirri V., Roussel P., Hernandez-Verdun D. The AgNOR proteins: qualitative and quantitative changes during the cell cycle // Micron. - 2000. - V. 31 (2). - Р. 121-126.
23. Sparrow A.H., Schairer L.A., Sparrow R.C. Re-lationship between nuclear volumes, chromo-some numbers and relative radiosensitivities // Sciece. - 1963. 163-6.
