Оренбург, Россия
Оренбург, Оренбургская область, Россия
Оренбург, Оренбургская область, Россия
Россия
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.4 Садоводство, овощеводство, виноградарство и лекарственные культуры
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.1 Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.2.5 Разведение, селекция, генетика и биотехнология животных
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 639.3.043.13 Рациональное кормление
Цель исследования – изучить эффективность включения нанокомпозита Cu-C в рацион карпа. Задачи: исследовать влияние нанокомпозита Cu-C (40–60 нм) в дозировках 0,8 и 2 мг/кг корма в рационе карпа на морфологический состав крови и биохимический состав сыворотки крови. Исследование было проведено на базе кафедры биотехнологии животного сырья и аквакультуры Оренбургского государственного университета (г. Оренбург). Длительность исследований – 56 сут. Сформированы три группы карпа (Cyprinus carpio): контрольная и 2 опытные. Контрольной группе задавали основной рацион (ОР) (корм КРК-110), опытные группы дополнительно к ОР получали нанокомпозит Cu-C (40–60 нм): I опытная – в дозировке 0,8 мг/кг корма, II опытная – в дозировке 2 мг/кг корма. Нанокомпозит Cu-C (40–60 нм) представляет собой углеродную матрицу с наночастицами меди. Получен плазменно-дуговой технологией синтеза на углеродной матрице в Институте теплофизики им. С.С. Кутателадзе СО РАН (г. Новосибирск). Морфологические и биохимические показатели крови исследовали по стандартизованным методикам в Испытательном центре ЦКП БСТ РАН (г. Оренбург). Биометрический анализ результатов был выполнен в программе Statistica 10.0 (Stat Soft Inc., США) с помощью вариационной статистики по Стьюденту. Статистически значимыми считались различия с P ≤ 0,05. Включение в рацион рыб нанокомпозита Cu-C в различных дозировках не вызвало изменений в поведении рыб. Применение в рационе нанокомпозита Cu-C не привело к нарушениям белкового, липидного и энергетического обмена веществ, при этом использование дозировки 0,8 мг/кг корма повысило физиологический стресс. Значимый метаболический эффект был зафиксирован во II опытной группе при дозировке нанокомпозита Cu-C 2 мг/кг корма. Использование нанокомпозитов открывает новые перспективы по разработке современных подходов по управлению метаболизмом объектов аквакультуры.
нанокомпозиты, аквакультура, карп, гематологические параметры, биохимические показатели крови карпа, наночастицы
1. Lvov YuB, Shishanov GA. Trophic potential of integrated systems based on industrial aquaculture. Vestnik of astrakhan state technical university. Series: fishing industry. 2022;(1):71-78. DOI:https://doi.org/10.24143/2073-5529-2022-1-71-78. EDN: https://elibrary.ru/QKZHVR.
2. Zadelenova AV, Zadelenov VA, Chetvertakova EV., et al. Growth dynamics of juvenile freshwater form of Arctic char Salvelinus alpinus (L.) in the conditions of industrial fish farming. Bulletin of KSAU. 2023;(12):230-236. (In Russ.). DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2023-12-230-236. EDN: https://elibrary.ru/AUHVXG.
3. Zueva MS, Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, et al. Experience of application of a new feed additive in carp feeding (Cyprinus carpio). The Agrarian Scientific Journal. 2023;(4):44-49. DOI: 10.28983/ asj.y2023i4pp44-49. EDN: https://elibrary.ru/PVZQUN.
4. Arinzhanova MS, Miroshnikova EP, Arinzhanov AE, et al. The influence of ultrafine zinc particles and phytobiotic supplement based on essential oils on the growth and elemental composition of carp muscle tissue. Veterinariya i kormlenie. 2024;(1):21-23. DOI:https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2024-1-3. EDN: https://elibrary.ru/PWCVRN.
5. Dar AH, Rashid N, Majid I, et al. Nanotechnology interventions in aquaculture and seafood preservation. Food Science and Nutrition. 2020;60(Iss. 11):1912-1921. DOI:https://doi.org/10.1080/10408398.2019.1617232. EDN: https://elibrary.ru/DJXGWA.
6. Nasr-Eldahan S, Nabil-Adam A, Attia Shreadah M, et al. A review article on nanotechnology in aquaculture sustainability as a novel tool in fish disease control. Aquaculture international: journal of the European Aquaculture Society. 2021;29(4):1459-1480. DOI:https://doi.org/10.1007/s10499-021-00677-7. EDN: https://elibrary.ru/RXMMCZ.
7. Okeke ES, Chukwudozie KI, Nyaruaba R, et al. Antibiotic resistance in aquaculture and aquatic organism: a review of current nanotechnology application for sustainable management. Environmental Science and Pollution Research International. 2022;29:69241-69274. DOI:https://doi.org/10.1007/s11356-022-22319-y. EDN: https://elibrary.ru/CKQFWO.
8. Elkady FM, Hashem AH, Salem SS, et al. Unveiling biological activities of biosynthesized starch/silver-selenium nanocomposite using Cladosporium cladosporioides CBS 174.62. BMS Microbiology. 2024;24:78. DOI:https://doi.org/10.1186/s12866-024-03228-1. EDN: https://elibrary.ru/EQPGSF.
9. Sali AK, Ravi AP, Shamsudeen SP, et al. Aloe vera incorporated chitosan/nanocellulose hybrid nanocompositesas potential edible coating material under humid conditions. Journal of Siberian Fe-deral University. Biology. 2021;14(4):475-497. DOI:https://doi.org/10.17516/1997-1389-0366. EDN: https://elibrary.ru/MVYCXA.
10. Abd-Elraoof WA, Taye AA, El-Far SW, et al. Characterization and antimicrobial activity of a chitosan-selenium nanocomposite biosynthesized using Posidonia oceanic. RSC Advances. 2023;13:26001-26014. DOI:https://doi.org/10.1039/d3ra04288j. EDN: https://elibrary.ru/WEDRGI.
11. Ahmed F, Soliman FM, Adly MA, et al. Recent progress in biomedical applications of chitosan and its nanocomposites in aquaculture: A review. Research in Veterinary Science. 2019;126:68-82. DOI:https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2019.08.005.
12. Wang J, Rao M, Ye C, et al. Cu-MOF derived Cu-C nanocomposites towards high performance electrochemical supercapacitors. RSC Advances. 2020;10:4621-4629. DOI:https://doi.org/10.1039/C9RA09738D. EDN: https://elibrary.ru/LXTETL.
13. Spirina EV, Romanova EM. Cytogenetic homeostasis and hematological parameters of african sharptooth catfish (Clarias Gariepinus) in case of application of sporotermin probiotic. Vestnik Ul'yanovskoj gosudarstvennoj sel'skohozyajstvennoj akademii. 2019;(3):94-99. (In Russ.). DOI:https://doi.org/10.18286/1816-4501-2019-3-94-99. EDN: https://elibrary.ru/OWEXMR.
14. Ortiz M, Esteban MA. Biology and functions of fish thrombocytes: A review. Fish & Shellfish Immuno¬logy. 2024;148:109509. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fsi.2024.109509. EDN: https://elibrary.ru/GKUKAS.
15. Nikitina AP, Kosyaev NI. Hematological parameters of fish after applying biologically active feed additive. Uchenye zapiski Kazanskoj gosudarstvennoj akademii veterinarnoj mediciny im. N.E. Baumana. 2018;233(1):113-117. (In Russ.). EDN: https://elibrary.ru/YTJSBF.
16. Lal SP, Kaushik SJ. Nutrition and Metabolism of Minerals in Fish. Animals (Basel). 2021;11(9):2711. DOI:https://doi.org/10.3390/ani11092711. EDN: https://elibrary.ru/OOQBTS.
17. Ashaf-Ud-Doulah M, Mamun Al A, Rahman ML, et al. High temperature acclimation alters upper thermal limits and growth performance of Indian major carp, rohu, Labeo rohita (Hamilton, 1822). Journal of Thermal Biology. 2020;93:102738. DOI:https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2020.102738. EDN: https://elibrary.ru/GZCDLS.
18. Akhmetova VV, Vasina SB. Assessment of morphological and biochemical blood picture of carps grown in LLC "Fish farm" in Ulyanovsk District of Ulyanovsk Region. Vestnik Ul'yanovskoj gosudarstvennoj sel'skohozyajstvennoj akademii. 2015;(3):53-58. (In Russ.). DOI:https://doi.org/10.18286/1816-4501-2015-3-53-58. EDN: https://elibrary.ru/UMIAYZ.
19. Mikryakov DV, Revyakin AO, Pronina GI, et al. Biochemical indices of blood serum of rubella-resistant carp breed at the end of the feeding period. Transactions of Papanin Institute for Biology of Inland Waters RAS. 2020;(92):113-119. (In Russ.). DOI:https://doi.org/10.47021/0320-3557-2021-113-119. EDN: https://elibrary.ru/TRHOPI.
20. Tunçsoy M. Impacts of Metal Nanoparticles on Fish. In: Shanker U, Hussain CM, Rani M, editors. Handbook of Green and Sustainable Nanotechnology. Springer Nature, 2022. P. 8–39. DOI: 10.1007/ 978-3-031-16101-8_39.
21. Pronina GI, Koryagina NYu. Reference values of physiological and immunological indicators of hydrobionts of different species. Vestnik Astrahanskogo gosudarstvennogo tekhnicheskogo universiteta. Seriya: Rybnoe hozyajstvo. 2015;(4):103-108. (In Russ.). EDN: https://elibrary.ru/VDPCLR.
22. Il EN, Zabolotnykh MV, Il DE. Identifying trends of changes in biochemical indicators of blood during metabolic disorders in highly productive cows. Bulletin of KSAU. 2023;(12):154-161. (In Russ.). DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2023-12-154-161. EDN: https://elibrary.ru/TNPXYH.
23. Seibel H, Babmann B, Rebl A. Blood Will Tell: What Hematological Analyses Can Reveal About Fish Welfare. Frontiers in Veterinary Sciences. 2021;8:616955. DOI:https://doi.org/10.3389/fvets.2021.616955. EDN: https://elibrary.ru/DXQERA.