Россия
Цель исследований – оценить эффективность комбинации препаратов «Золетил 50» и «Медетомидин» для иммобилизации египетских летучих собак. Приведен литературный обзор по анестезии египетских летучих собак и результаты собственных исследований с применением схемы анестезиологического сопровождения «Золетил 50» + «Медетомидин». Приведена оценка эффективности применения комбинации препаратов «Золетил 50» + «Медетомидин» и их влияния на процесс анестезии и организм животных в сравнении с результатами различных протоколов, используемых для крыланов. Работа проведена на клинически здоровых самцах. Выявлено, что при использовании схемы «Золетил 50» + «Медетомидин» во время наркоза снижались показатели частоты сердечных сокращений (ЧСС) и дыхательных движений (ЧДД). Уменьшение ЧСС и ЧДД менее выражено, чем при других протоколах инъекционной анестезии с применением препаратов «Кетамин», «Салин», «Фентанил», «Морфин» и «Буторфанол». У некоторых из крыланов наблюдался нерегулярный характер дыхания в течение коротких периодов времени при всех видах анестезии. ЧДД и ЧСС увеличивались одновременно с появлением рефлекса отдергивания и реакции на шум, достигая исходных значений после восстановления. При использовании схемы «Золетил 50» + «Медетомидин» седация наступает через 10,0 ± 2,3 мин, еще через 2,5 мин регистрируют потерю роговичного рефлекса. Выход из наркоза происходит через 31,0 ± 5,8 мин после введения «Антипамезола», полное восстановление наступает через 69,7 ± 14,5 мин, что сравнимо с анестезией по схеме «Медетомидин» + «Мидазолам» + «Салин». При применении схемы «Золетил 50» + «Медетомидин» не наблюдается подергивание ушей и крыльев, что регистрировалось при использовании других препаратов, особенно «Кетамина». В статье доказана эффективность применения для иммобилизации крыланов комбинации «Золетил 50» + «Медетомидин», данная схема является хорошей альтернативой многим препаратам.
анестезия, иммобилизация, египетские летучие собаки, «Золетил», «Медетомидин»
Введение. Египетская летучая собака, или нильский крылан (Rousettus aegyptiacus), – вид рукокрылых семейства крыланов. Это небольшие животные (длина до 17 см), представленные во многих зоопарках России и мира [1]. Крыланы десятилетиями подвергались исследованиям в различных областях, изучались их анатомия, физиология, механизмы эхолокации и способность адаптироваться к различным условия [2–4]. H.C. Lane и H. Huggel провели несколько исследований, в которых описали особенности иннервации пястных вен и артерий крыла, а также холинергической иннервации крыльев. Z. Arad и C. Korine в своих исследованиях отмечали высокую способность этих животных приспосабливаться к меняющимся условиям окружающей среды. Почки крыланов хорошо приспособлены к водной нагрузе, выделяя большие объемы (14 % массы тела в день) разбавленной мочи (113 ± 25 мосмоль/кг H2P-1), а также уменьшая объем мочи (–95 %) и повышая осмотическую концентрацию (555±280 мосмоль/кг H2O-1) при ограничении воды. Гематокрит, концентрация гемоглобина в плазме и общий белок при этом не изменяются. Некоторые исследователи отмечали роль египетских летучих собак в распространении антропозоонозных заболеваний. B.R. Amman с соавторами отмечали совпадение сезонных вспышек вируса «Марбург» молодняка нильских крыланов с повышенной заражаемостью этой инфекцией людей, патогенный для человека вирус «Сосуга» из сем. Paramixovirdae был обнаружен в колониях египетских летучих собак в различных районах Уганды [5, 6].
В условиях зоопарков и в научных лабораториях возникает необходимость проведения манипуляций, требующих иммобилизации животных. К сожалению исследований, описывающих различные методики и препараты, применяемые в анестезии египетских летучих собак, крайне мало. J. Barrett и A.Olson применяли в качестве общей анестезии по отдельности такие препараты, как «Кетамин», «Ксилазин» и «Медетомидин», но известно, что сочетание нескольких анестетиков обычно имеет преимущество, так как при этом используются более низкие индивидуальные дозы, снижаются нежелательные побочные эффекты и повышается эффективность препаратов. J.H. Epstein et al. отмечали, что при использовании только «Медетомидина» адекватная анестезия наступала у 55 % (6 из 11 особей) животных, а дозы «Медетомидина»/«Кетамина» 0,05/5,0 мг/кг и «Медетомидина»/«Кетамина» 0,25/2,5 мг/кг вызывали анестезию у 100 %. Наиболее распространенными комбинациями, используемыми для анестезии нильских крыланов, являются альфа-2-адренергические агонисты, такие как «Ксилазин» или «Медетомидин», с диссоциативным анестетиком «Кетамином». Avishag Tuval и другие используют комбинацию «Кетамина» 15 мг/кг и «Медетомидина» 0,06 мг/кг для индукционной анестезии с последующим введением «Изофлурана» через лицевую маску. Такие комбинации обычно эффективны, так как альфа-2 агонисты потенцируют «Кетамин» и обеспечивают расслабление мышц, а он, в свою очередь, стабилизирует частоту сердечных сокращений и артериальное давление, а также обеспечивает некоторую анальгезию. Однако применение этих препаратов вместе может вызывать длительный период восстановления, повышение риска развития гипотермии, увеличивает частоту кататонических реакций, таких как тремор и ригидность мускулатуры [7–9].
Использование ингаляционной анестезии имеет преимущества. D. Heard отмечал, что применение «Изофлурана» является наиболее подходящим методом анестезии в связи с широким диапазоном безопасности, незначительным метаболизмом, быстрой индукцией и реверсией, но он не всегда доступен в полевых условиях, а также существует высокий риск утечки анестезирующего газа через неплотно прилегающую лицевую маску, что увеличивает риск развития профессиональных заболеваний ветеринарных хирургов и анестезиологов [10, 11]. В связи с этим можно заключить, что необходимы альтернативные схемы, которые могут совмещать в себе высокую эффективность, минимальное проявление побочных эффектов и доступность для ветеринарных специалистов.
«Медетомидин» и «Золетил» – одни из наиболее распространенных препаратов выбора для анестезии мелких домашних животных в нашей стране. «Медетомидин» оказывает сильное снотворное действие и способен вызывать миорелаксацию, анальгезирующие свойства у него выражены достаточно слабо, следовательно, в комбинации с ним необходимо использовать анальгетики («Кетамин», «Золетил»). «Кетамин» не доступен для большинства ветеринарных клиник в связи с необходимостью получать лицензию, что требует финансовых затрат, он не зарегистрирован в РФ для использования в ветеринарии. «Золетил» – препарат, содержащий в своем составе два компонента: аналог «Кетамина» («Телитамин») и «Бензодиазепинов» («Золозепам») – и обладающий всеми качествами этих групп препаратов, доступен для большинства ветеринаров. Таким образом, можно предположить, что применение комбинации препаратов «Золетил» + «Медетомидин» может быть наиболее общепринятым методом иммобилизации для египетских летучих собак, но на данный момент он недостаточно изучен.
Цель исследования – оценить эффективность схемы препаратов «Золетил 50» + «Медетомидин» для иммобилизации египетских летучих собак.
Задачи: литературный обзор по анестезии египетских летучих собак; отбор клинически здоровых животных для собственных исследований; проведение хирургической манипуляции с протоколом анестезии «Золетил 50» + «Медетомидин»; оценка эффективности применения схемы; определение степени воздействия на гомеостаз организмов животных; сравнительный анализ результатов исследования с существующими протоколами.
Объекты и методы. Исследования проводились на базе МАУК «Калининградский зоопарк», г. Калининград. Для исследования были отобраны 7 особей египетских летучих собак – самцы, клинически здоровые, возраст около 1 года. Животные содержались в одном вольере, в одинаковых условиях, приближенных к их естественной среде обитания (температура 3 °С, влажность 70 %, режим смены дня и ночи – 12 ч). Животных кормили сезонными фруктами и добавками. В качестве хирургической манипуляции проводилась орхиэктомия (удаление семенников). Перед операцией животных отсаживали в отдельную клетку, выдерживалась 12-часовая голодная диета, вода в свободном доступе. Вводимые препараты:
- протокол иммобилизации: «Золетил 50» 8,0 мг/кг + «Медетомидин» 0,04 мг/кг – в/м, «Антипамезол» 0,2 мг/кг – в/м;
- протокол анестезии: 1) «Анальгин» 4,0 мг/кг + «Мелоксикам» 0,2 мг/кг – в/м; 2) «Маропитант» 1,0 мг/кг – в/м; 3) «Метоклопрамид» 0,2 мг/кг – в/м;
- «Амоксициллин» 20,0 мг/кг – п/к.
Оценивались показатели: ЧСС, ЧДД, скорость наступления седации, потеря роговичного рефлекса, реверс и полное восстановление животного от момента введения препаратов.
Результаты и их обсуждение. Результаты определения физиологических показателей у египетских летучих собак до и во время наркоза представлены в таблице 1.
Таблица 1
Физиологические параметры египетских летучих собак
|
Номер животного |
Вес, кг |
ЧСС, уд/мин |
ЧДД, дых/мин |
||
|
до наркоза |
во время наркоза |
до наркоза |
во время наркоза |
||
|
1 |
0,186 |
186 |
120 |
96 |
80 |
|
2 |
0,187 |
200 |
120 |
90 |
87 |
|
3 |
0,178 |
172 |
144 |
100 |
93 |
|
4 |
0,180 |
170 |
144 |
99 |
92 |
|
5 |
0,197 |
160 |
153 |
80 |
68 |
|
6 |
0,131 |
190 |
140 |
87 |
80 |
|
7 |
0,206 |
177 |
136 |
95 |
84 |
|
Среднее значение |
0,181±50 |
179,3±13,6 |
136,7±12,5 |
92,4±7,2 |
83,4±8,6 |
На основании данных таблицы 1 можно заключить, что во время наркоза снижаются показатели ЧСС на 42 удара в минуту и ЧДД на 8 дыханий в минуту. Падение этих показателей менее выражено, чем при других протоколах инъекционной анестезии с применением таких препаратов, как «Кетамин», «Салин», «Фентанил», «Морфин» и «Буторфанол», при которых ЧСС и ЧДД снижается в среднем в 2 раза [12]. У некоторых из крыланов наблюдался нерегулярный характер дыхания в течение коротких периодов времени при всех видах анестезии. ЧДД и ЧСС увеличивались одновременно с появлением рефлекса отдергивания и реакции на шум, достигая исходных значений после восстановления. Течение наркоза представлено в таблице 2.
Таблица 2
Показатели течения наркоза
|
Номер животного |
Седация, мин |
Потеря роговичного рефлекса, мин |
Хирургическая манипуляция, мин |
Реверс, мин |
Полное восстановление, мин |
|
1 |
10 |
12 |
29 |
39 |
96 |
|
2 |
7 |
10 |
25 |
33 |
77 |
|
3 |
9 |
13 |
21 |
31 |
56 |
|
4 |
9 |
13 |
22 |
31 |
56 |
|
5 |
12 |
12 |
21 |
29 |
67 |
|
6 |
14 |
15 |
28 |
20 |
60 |
|
7 |
10 |
12 |
23 |
34 |
76 |
|
Среднее значение |
10,1±2,3 |
12,4±1,5 |
24,1±3,3 |
31,0±5,8 |
69,7±14,5 |
Согласно таблице 2, седация наступает в среднем через 10 ± 2,3 мин, еще через 2,5 мин регистрируется потеря роговичного рефлекса. После завершения хирургической операции крыланам вводился «Антипамезол» 0,2 мг/кг – в/м. Животные помещались на грелку и наблюдались до полного восстановления. Выход из наркоза наблюдался через 31,0 ± 5,8 мин, полное восстановление наступало через 69,7 ± 14,5 мин. Эти результаты сравнимы с анестезией по схеме «Медетомидин» + «Мидазолам» + «Салин», но отрезок времени до полного восстановления после наркоза при применении схемы «Золетил 50» + «Медетомидин» на 20 мин меньше.
При использовании схемы анестезии «Золетил 50» + «Медетомидин» не наблюдались эффекты подергивания ушей и крыльев, которые встречались при других сочетаниях препаратов, особенно при использовании «Кетамина» [11]. Животные находились в глубоком сне, после выхода из наркоза быстро восстанавливались и через 24 ч возвращались в общую клетку под наблюдением ветеринарных врачей и зоокиперов.
Заключение. Применение в качестве анестезии египетских летучих собак комбинации препаратов «Золетил 50» + «Медетомидин» показало хорошие результаты. Животные быстро засыпали, сон был глубоким, без побочных реакций (подергивание ушей и крыльев). Не наблюдалось сильного угнетения дыхания и сердцебиения, примерно через 1 ч 10 мин после введения препаратов наблюдалось полное восстановление. Побочных эффектов от применения препаратов не выявлено.
На основании полученных данных можно сделать вывод, что применение в качестве препаратов для иммобилизации египетских летучих собак схемы «Золетил 50» + «Медетомидин» эффективно и является альтернативой для большинства препаратов, которые в настоящее время являются недоступными для ветеринарных врачей РФ.
1. Соколов В.Е. Пятиязычный словарь названий животных. М.: Русский язык, 1984. 352 с.
2. Arad Z., Korine C. Effect of water restriction on energy and water balance and osmoregulation of the fruit bat Rousettus aegyptiacus // J Comp Physiol B 1993; 163: 401–405.
3. Lane H.C., Schonenberger N., Huggel H.J. The innervation of the metacarpal vein and artery of the wing of Megachiroptera (Rousettus aegyptiacus and Pteropus giganteus) // Rev Suisse Zool 1971; 78: 655–660.
4. Rigby E.L., Aegerter J., Brash M. Impact of PIT tagging on recapture rates, body condition and reproductive success of wild Daubenton's bats (Myotis daubentonii) // Vet Rec. 2012; 170:101.
5. Seasonal pulses of Marburg virus circulation in juvenile Rousettus aegyptiacus bats coincide with periods of increased risk of human infection / B.R. Amman [et al.] // PLoS Pathog. 2012; 8: 27–29.
6. A recently discovered pathogenic paramyxovirus, Sosuga virus, is present in Rousettus aegyptiacus fruit bats at multiple locations in Uganda / B.R. Amman [et al.] // J Wildl Dis. 2015; 51: 774–779.
7. Barrett J., Olson A. Chemical restraint and anesthesia – flying foxe. In: Barnard SM (ed.) Bats in captivity. Washington, DC: Logos Press, 2009.
8. Comparison of intravenous medetomidine and medetomidine/ketamine for immobilization of free-ranging variable flying foxes (Pteropus hypomelanus) / J.H. Epstein [et al.] // PLoS One. 2011; 6: e25361.
9. Murphy K.L., Roughan J.V., Baxter M.G. Anaesthesia with a combination of ketamine and medetomidine in the rabbit: effect of premedication with buprenorphine // Vet Anaesth Analg 2010; 37: 222–229.
10. Todd T.E., Morse J.M., Casagni T.J. Monitoring and mitigating isoflurane emissions during inhalational anesthesia of mice // Lab Anim. 2013; 42: 371–379.
11. Huske C., Sander S.E., Hamann M. Towards optimized anesthesia protocols for stereotactic surgery in rats: analgesic, stress and general health effects of injectable anesthetics. A comparison of a recommended complete reversal anesthesia with traditional chloral hydrate monoanesthesia // Brain Res. 2016; 1642: 364-375.
12. Tuval A., Las L., Shilo-Benjamini Y. Evaluation of injectable anaesthesia with five medetomidine-midazolam based combinations in Egyptian fruit bats (Rousettus aegyptiacus) // Laboratory Animals. 2018;52(5):515–525.
