сотрудник с 01.01.2023 по настоящее время
сотрудник
сотрудник
ВАК 4.1.6 Лесоведение, лесоводство, лесные культуры, агролесомелиорация, озеленение, лесная пирология и таксация
ВАК 4.1.1 Общее земледелие и растениеводство
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.1 Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.2.5 Разведение, селекция, генетика и биотехнология животных
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 631.535 Размножение черенками
УДК 634.739.2 Клюква. Vaccinium oxycoccus L.
Цель исследований – изучение влияния обработки стимуляторами роста на укореняемость одревесневших черенков клюквы болотной при выращивании в условиях г. Москвы. Исследования растений клюквы болотной (Vaccinium oxycoccos L.) были проведены в 2023–2024 гг. на базе УНПЦ Садоводства и овощеводства им. В.И. Эдельштейна (Российский государственный аграрный университет – МСХА имени К.А. Тимирязева). Объекты исследования – перспективные сорта клюквы болотной российской селекции (Дар Костромы, Фомич). Схема опыта предусматривала применение 4 вариантов стимуляторов роста для каждого сорта клюквы болотной: «Корневин» (10 мг/черенок); гетероауксин (200 мг/л); индолилмасляная кислота (100 мг/л); янтарная кислота (250 мг/л). Контролем послужили черенки растений без обработки стимуляторами. Процессы заготовки черенков, обработку растворами стимуляторами роста, посадку черенков на укоренение проводили по общепринятым методикам черенкования садовых культур. Период укоренения черенков сортов клюквы болотной в опыте составлял в среднем 28 дней. Укореняемость черенков клюквы болотной сорта Фомич во всех вариантах опыта превышала по данному показателю сорт Дар Костромы. В варианте с применением «Корневина» у всех изученных сортов клюквы отмечался наибольший процент укореняемости черенков (сорт Дар Костромы – 96,0 %, Фомич – 98,5 %). Наибольшая ризогенная зона наблюдалась у растений в варианте опыта с «Корневином» (сорт Дар Костромы – 120,7 см, Фомич – 125,5 см). Высокую эффективность по укоренению и дальнейшему развитию адвентивной корневой системы сортов клюквы болотной российской селекции показал препарат «Корневин» (укореняемость растений увеличилась в 1,5 раза по сравнению с контролем).
Vaccinium oxycoccos L., Ericaceae, сорт, вегетативное размножение, черенкование, регуляторы роста, ризогенез, укоренение
1. Česonienė L., Daubaras R., Paulauskas A., et al. Morphological and genetic diversity of european cranberry (Vaccinium oxycoccos L., Ericaceae) clones in lithuanian reserves // Acta Soc. Bot. Pol. 2013. Vol. 82, N 3. P. 211–217. DOI:https://doi.org/10.5586/asbp.2013.026.
2. Jurikova T., Skrovankova S., Mlcek J., et al. Bioactive compounds, antioxidant activity, and biological effects of european cranberry (Vaccinium oxycoccos) // Molecules. 2018. Vol. 24. P. 24. DOI:https://doi.org/10.3390/molecules24010024. EDN: https://elibrary.ru/WXLBMX.
3. Грибова Н.А., Елисева Л.Г. Исследование спроса и потребительских предпочтений переработанного плодово-ягодного сырья и продуктов на их основе // Вестник ВГУИТ. 2022. Т. 84, № 3. С. 432–438. DOI:https://doi.org/10.20914/2310-1202-2022-3-432-438. EDN: https://elibrary.ru/OSVMXD.
4. Стрельцова Т.В. Оценка перспектив развития рынка дикорастущей продукции // Grand Altai Research & Education. 2023. Вып. 1 (19). С. 54–61. DOI:https://doi.org/10.25712/ASTU.2410-485X. 2023.01. EDN: https://elibrary.ru/ESBWEJ.
5. Макаров С.С., Багаев Е.С., Цареградская С.Ю., и др. Проблемы использования и воспроизводства фитогенных пищевых и лекарственных ресурсов леса на землях лесного фонда Костромской области // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. 2019. № 6 (372). С. 118–131. DOI:https://doi.org/10.17238/issn0536-1036.2019.6.118. EDN: https://elibrary.ru/DSJOXN.
6. Мартынюк А.А., Курлович Л.Е., Трушина И.Г., и др. Лесные дикоросы – ресурсы, использование и нормативное правовое регламентирование: аналитический обзор // Лесохозяйственная информация. 2023. № 4. С. 117–165. DOI:https://doi.org/10.24419/LHI. 2304-3083.2023.4.11. EDN: https://elibrary.ru/VLWCAU.
7. Ким И.Н., Давыдов А.А. Состояние и перспективы развития сбора и переработки дикоросов в Российской Федерации // Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК – продукты здорового питания. 2024. № 2. С. 150–158. DOI:https://doi.org/10.24412/2311-6447-2024-2-150-158. EDN: https://elibrary.ru/OFYLPG.
8. Česonienė L., Daubaras R., Jasutienė I., et al. Investigations of anthocyanins, organic acids, and sugars show great variability in nutritional and medicinal value of european cranberry (Vaccinium oxycoccos) fruit // Journal of Applied Botany and Food Quality. 2015. Vol. 88. P. 295–299. DOI:https://doi.org/10.5073/JABFQ. 2015.088.042. EDN: https://elibrary.ru/OFYLPG.
9. Коренев И.А., Тяк Г.В., Макаров С.С. Создание новых сортов лесных ягодных растений и перспективы их интенсивного размножения (in vitro) // Лесохозяйственная информация. 2019. № 3. С. 180–189. DOI: 10.24419/ LHI.2304-3083.2019.3.15. EDN: https://elibrary.ru/XDLLSL.
10. Макаров С.С., Виноградова В.С., Тяк Г.В., и др. Теория и практика размножения и плантационного выращивания лесных ягодных растений Rubus arcticus L., Oxycoccus palustris Рers. и Vaccinium angustifolium Аit. Караваево: Костромская ГСХА, 2021. 394 с. EDN: https://elibrary.ru/SWVFIO.
11. Gupta S., Bhattacharyya P., Kulkarni M.G., et al. Editorial: growth regulators and biostimulants: upcoming opportunities // Front. Plant Sci. 2023. Vol. 14. P. 1209499. DOI:https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1209499. EDN: https://elibrary.ru/PBRKGM.
12. Sosnowski J., Truba M., Vasileva V. The Impact of Auxin and Cytokinin on the Growth and Development of Selected Crops // Agriculture. 2023. Vol. 13. P. 724. DOI:https://doi.org/10.3390/agriculture13030724. EDN: https://elibrary.ru/OWIPIT.
13. Su J., Liu Y., Han F., et al. ROS, an important plant growth regulator in root growth and development: functional genes and mechanism // Biology (Basel). 2024. Vol. 13, № 12. P. 1033. DOI:https://doi.org/10.3390/biology 13121033. EDN: https://elibrary.ru/GCTSTS.
14. Акимова С.В., Аладина О.Н., Киркач В.В., и др. Эффективность применения модификаций препарата Суперстим в малых дозах на этапе индукции ризогенеза растений рода Rubus L. с учетом последействия на этапе адаптации // Достижения науки и техники АПК. 2017. Т. 31, № 2. С. 39–44. EDN: https://elibrary.ru/YKUTAB.
15. Радчевский П.П. Влияние биологически активных веществ на регенерационные свойства виноградных черенков, выход и качество саженцев. Краснодар: Кубанский государственный университет; 2017. 275 c. EDN: https://elibrary.ru/XUYILB.
16. Petrasek J., Hoyerova K., Motyka V., et al. Auxins and Cytokinins in plant development 2018 // Int. J. Mol. Sci. 2019. Vol. 20. P. 909. DOI:https://doi.org/10.3390/ijms20040909. EDN: https://elibrary.ru/XUYILB.
17. Kurepa J., Smalle J.A. Auxin/Cytokinin antagonistic control of the shoot/root growth ratio and its relevance for adaptation to drought and nutrient deficiency stresses // Int. J. Mol. Sci. 2022. Vol. 23, N 4. P. 1933. DOI:https://doi.org/10.3390/ijms23041933. EDN: https://elibrary.ru/XYLOLD.
18. Müller M., Wang R., Kudoyarova G. Editorial: advances in plant hormone research in the face of a changing environment // Front. Plant Sci. 2023. Vol. 14. P. 1239758. DOI:https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1239758. EDN: https://elibrary.ru/GIPRKG.
19. Кузнецова И.Б., Макаров С.С. Влияние питательной среды и росторегулирующих веществ на корнеобразование клюквы болотной (Oxycoccus palustris Pers.) in vitro // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021. № 6 (92). С. 99–103. DOI:https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-92-6-99-103. EDN: https://elibrary.ru/VFSLNO.
20. Кузнецова И.Б., Макаров С.С. Влияние концентрации ауксина ИУК и препарата Экогель на ризогенез клюквы болотной (Oxycoccus palustris Pers.) in vitro // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии имени В.Р. Филиппова. 2022. № 1 (66). С. 99–104. DOI:https://doi.org/10.34655/bgsha.2022.66.1.013. EDN: https://elibrary.ru/VFSLNO.
21. Макаров С.С., Кузнецова И.Б., Сурина Е.А. Ризогенез российских сортов клюквы болотной in vitro в зависимости от концентрации росторегулирующих веществ // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 4 (96). С. 75–80. DOI:https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-96-4-75-86. EDN: https://elibrary.ru/ZEXOPV.
22. Князев С.Д., Голяева О.Д., Жук Г.П., и др. Производство оздоровленного посадочного материала ягодных и малораспространенных культур. Орел: ВНИИСПК, 2012. 240 c. EDN: https://elibrary.ru/XWGHQZ.
23. Антонов А.М., Чудецкий А.И., Черятова Ю.С., и др. Совершенствование технологического цикла клонального микроразмножения Rubus chamaemorus L. // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. 2024. № 5 (401). С. 214–226. DOI:https://doi.org/10.37482/0536-1036-2024-5-214-226. EDN: https://elibrary.ru/KSPUDD.
24. Тяк Г.В., Курлович Л.Е., Макаров С.С. Размножение гибридных форм голубики узколистной одревесневшими черенками // Лесохозяйственная информация. 2022. № 3. С. 95–104. DOI:https://doi.org/10.24419/LHI.2304-3083.2022.3.08. EDN: https://elibrary.ru/BKAWXL.
25. Тарасенко М.Т. Зеленое черенкование садовых и лесных культур: теория и практика. М.: URSS, Ленанд, 2023. 272 c.
26. Калинин А.Г. Обработка данных методами математической статистики. Чита: ЗИП СибУПК, 2015. 105 c.
