ВАК 4.2.4 Частная зоотехния, кормление, технологии приготовления кормов и производства продукции животноводства
ВАК 4.1.1 Общее земледелие и растениеводство
ВАК 4.1.2 Селекция, семеноводство и биотехнология растений
ВАК 4.1.3 Агрохимия, агропочвоведение
ВАК 4.1.4 Садоводство, овощеводство, виноградарство и лекарственные культуры
ВАК 4.1.5 Мелиорация, водное хозяйство и агрофизика
ВАК 4.2.1 Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология
ВАК 4.2.2 Санитария, гигиена, экология, ветеринарно-санитарная экспертиза и биобезопасность
ВАК 4.2.3 Инфекционные болезни и иммунология животных
ВАК 4.2.5 Разведение, селекция, генетика и биотехнология животных
ВАК 4.3.3 Пищевые системы
ВАК 4.3.5 Биотехнология продуктов питания и биологически активных веществ
УДК 63 Сельское хозяйство. Лесное хозяйство. Охота. Рыбное хозяйство
УДК 61 Медицина. Охрана здоровья. Пожарное дело
УДК 616 Патология. Клиническая медицина
УДК 616-001.41 Резаные раны. Разрезы
УДК 619 Сравнительная патология. Ветеринария
Цель исследования – сравнительный анализ репаративных свойств хлорофилла (Chl), содержащегося в крапивном экстракте в качестве действующего вещества, а также гемина в свободной и полимерной формах на экспериментальной модели «резаная рана». В эксперименте были созданы условия для изучения вопроса регенерации раневой поверхности по типу вторичного натяжения. Исследования проводились на белых нелинейных мышах, подобранных методом пар-аналогов (масса, возраст, пол) и прошедших карантин в течение 7 сут. Были проанализированы площадь раны, наблюдения за процессом регенерации. Терапия была начата в 1-е сут после операции. Ежедневно наносили препараты в объеме 200 мкл. В ходе эксперимента оценивали общее состояние животных, двигательную активность, состояние раневой поверхности по фазам течения (воспаление, регенерация, эпителиализация) планиметрическим методом по J.I. Kundin. Полимерные формы Chl и гемина вызывали качественную репарацию тканей, сокращая сроки регенерации. Высокая степень репарации отмечалась в 1-й и 3-й опытных группах, заживление было по нормотрофическому типу. Средняя степень наблюдалась во 2-й и 4-й группах. На 7-е сут в 1-й группе сокращение раневой поверхности было наиболее интенсивным из всех опытных групп – на 47 %. Во 2-й опытной группе площадь раны сократилась на 43,6 %, имелись раны без образования струпа с низкой грануляцией. В 3-й опытной группе мышей наблюдалось увеличение площади раневой поверхности в пределах ошибки на 14 %, у мышей 4-й опытной группы результат достоверного уменьшения площади раневой поверхности составил 6,6 %. На 21-е сут у мышей опытных групп раневая поверхность полностью прошла процесс эпителизации. Полимерные формы Chl и гемина в данном опыте продемонстрировали высокую регенеративную активность. Полученные данные позволяют сделать предположение о возможности их применения для лечения сельскохозяйственных животных.
модель «резаная рана», полимерная форма, хлорофилл (Chl), гемин, поли-N-винилпирролидон
1. Ревякин И.В., Медведева Л.В., Петренко В.А. Клинико-морфологическая оценка эффективности применения новых методов лечения кожных ран у животных в сравнительном аспекте // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2017. № 9 (155). С. 165–170.
2. Prunier A., Mounier L., Le Neindre P. et al. Identifying and monitoring pain in farm animals: a review // Animal. 2013. Vol. 7 (6). P. 998–1010. DOI:https://doi.org/10.1017/S1751731112002406.
3. Теребова С.В. Травматизм у овец. В сб.: Международная научно-практическая конференция «Научное обеспечение АПК регионов». Хабаровск, 2024. С. 125–129.
4. Lardy R., de Boyer des Roches A., Capdeville J. et al. New recommendations for self-locking barriers to reduce skin injuries in dairy cows // Animal. 2020. Vol. 14, is. 8. P. 1745–1756. DOI:https://doi.org/10.1017/S 175173112000052X.
5. Schreiter R., Krätzschmar A., Freick M. Effect of pullet quality on the occurrence of plumage damage, skin injuries and mortality during the laying period in commercial laying hen farms // Europ. Poult. Sci. 2022. Vol. 86. P. 1–13. DOI:https://doi.org/10.1399/eps.2022.361.
6. Tao Wang, Chao Han, Hongqiang Jiang, et al. The Effect of Obesity on Clinical Outcomes After Minimally Invasive Surgery of the Spine: A Systematic Review and Meta-Analysis // World Neurosurg. 2018. Vol. 110. P. 438–449. DOI:https://doi.org/10.1016/j.wneu.2017.11.010.
7. Carneiro da Fontoura Pereira R., Desessards De La Côrte F., Brass K.E., et al. Evaluation of Three Methods of Platelet-Rich Plasma for Treatment of Equine Distal Limb Skin Wounds // J Equine Vet Sci. 2019. Vol. 72. P. 1–7. DOI:https://doi.org/10.1016/j.jevs.2017.10.009.
8. Оприщенко А.А., Штутин А.А., Коктышев И.В. Использование атравматичных перевязочных материалов в повязочном лечении огнестрельных ран нижних конечностей // Университетская клиника. 2019. № 2 (31). С. 34–38. DOI:https://doi.org/10.26435/uc.v0i2(31).339.
9. Колосова О.В., Чуев Н.А., Бондаренко А.И. Клинический случай лечения длительно незаживающих септических ран у кошек // Вестник КрасГАУ. 2024. № 9. С. 109–115. DOI: 10.36718/ 1819-4036-2024-9-109-115.
10. Gope A., Mukhopadhyay A., Mukhopadhyay O., et al. Regenerative repair of full thickness skin wound assisted by dual crosslinking percolative gel casting maneuvered alginate hydrogel embedded with honey ghee blend resembles standard cutaneous properties // J Tissue Viability. 2022. Vol. 31 (4). P. 657–672. DOI:https://doi.org/10.1016/j.jtv.2022.07.007.
11. Wu Mi, Deng Dafeng, Peng Deyi, et al. Development of low-molecular-weight polysaccharide-based wound dressings for full-thickness cutaneous wound healing via coacervate formation // Carbohydrate Polymers. 2025. Vol. 348, part A. 122851. DOI:https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2024.122851.
12. Haq Zulfqar ul, Saleem Afnan, Alam Khan Azmat, et al. Nutrigenomics in livestock sector and its human-animal interface-a review // Veterinary and Animal Science. 2022. Vol. 6, is. 17. 100262. DOI:https://doi.org/10.1016/j.vas.2022.100262.
13. Niranjana S., Udupa Prarthana A., Ganapathisankarakrishnan A., et al. Comparative analysis of in vitro antioxidant and wound healing activities of Indian paalai plant extracts and investigation of their phytochemical profile by GC-MS // Pharmacological Research – Natural Products. 2025. Vol. 7. 100202. DOI:https://doi.org/10.1016/j.prenap.2025.100202.
14. Ahmadi A., Shahidi S., Safari R., et al. Evaluation of stability and antibacterial properties of extracted chlorophyll from alfalfa (Medicago sativa L.) // Food and Chemical Toxicology. 2022. Vol. 163. 112980. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fct.2022.112980.
15. Alsarayreh A.Z., Oran S.A., Shakhanbeh J.M., et al. Efficacy of methanolic extracts of some medicinal plants on wound healing in diabetic rats // Heliyon. 2022. Vol. 2 (8). P. 10071. DOI:https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e10071.
16. Nazir F., Javed S., Nazir A., et al. Natural plant extract-treated bioactive textiles for wound healing // Medical Textiles from Natural Resources. 2022. January. P. 137–166. DOI:https://doi.org/10.1016/B978-0-323-90479-7.00007-5.
17. Safna M.I., Visakh U.V., Gangadharan A. Biological activity of hexane extract of Hemigraphis colorata, an indigenous wound healing plant // Journal home page for Materials Today: Proceedings. 2020. Vol. 25, part 2. P. 294–297. DOI:https://doi.org/10.1016/j.matpr.2020.01.461.
18. Chen Y., Feng T., Zhu X., et al. Ambient Synthesis of Porphyrin-Based Fe-Covalent Organic Frameworks for Efficient Infected Skin Wound Healing // Biomacromolecules. 2024. Vol. 25, is. 6. P. 3671–3684. DOI:https://doi.org/10.1021/acs.biomac.4c00261.
19. Laranjo M., Alves J.S.A., Botelho F., et al. Photodynamic therapy for skin wound healing: the role of porphyrin type photosensitizers // Drug Delivery Systems for Wound Healing. 2025. Ch. 11. P. 305–336. DOI:https://doi.org/10.1016/B978-0-323-85840-3.00011-X.
20. Ferjani S., Hamzaoui Z., Kanzari L., et al. Emergence of a methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains with an unusual susceptibility antibiotic pattern in Tunisia // Infect Chemother. 2025. Vol. 31 (4). P. 102677. DOI:https://doi.org/10.1016/j.jiac.2025.102677.
21. Laliwala A., Gupta R., Svechkarev D., et al. Machine learning assisted identification of antibiotic-resistant Staphylococcus aureus strains using a paper-based ratiometric sensor array // Microchemical Journal. 2024. Vol. 206. P. 111395. DOI:https://doi.org/10.1016/j.microc.2024.111395.
22. Ubah Chukwudi S., Pokhrel Lok R., Williams Jordan E., et al. Total Environ Antibacterial efficacy, mode of action, and safety of a novel nano-antibiotic against antibiotic-resistant Escherichia coli strains // Sci Total Environ. 2024. Vol. 15, is. 925. P. 171675. DOI:https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2024.171675.
23. Kasouni A.I., Chatzimitakos T.G., Stalikas C.D., et al. The Unexplored Wound Healing Activity of Urtica dioica L. Extract: An In Vitro and In Vivo Study // Molecules. 2021;26(20):6248. DOI:https://doi.org/10.3390/molecules26206248.
24. Liu X., Xu Y., Wu Z., et al. Poly(N-vinylpyrrolidone)-modified surfaces for biomedical applications // Macromol Biosci. 2013. Vol. 13, is. 2: P. 147–154. DOI:https://doi.org/10.1002/mabi.201200269.
25. Осокина А.С., Масленников И.В., Михеева Е.А. Регенеративная способность покровных тканей при применении фракций продуктов жизнедеятельности личинок G. mellonella // Вестник КрасГАУ. 2024. № 9. С. 95–102. DOI:https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-9-95-102.
26. European Communities Council Directives of 24 November 1986, 86/609/EEC. Доступно по: http://data.europa.eu/eli/dir/1986/609/oj. Ссылка активна на 15.08.2025.
27. Alimoddin M., Jayakumari S., Butool F., et al. Pharmacological applications of Urtica dioica: a comprehensive review of its traditional use and modern scientific evidence // Journal of Herbal Medicine. 2024. Vol. 48. P. 100935. DOI:https://doi.org/10.1016/j.hermed.2024.100935.
28. Rehman G., Khan I., Rauf A. Antidiabetic Properties of Caffeoylmalic Acid, a Bioactive Natural Compound Isolated from Urtica dioica // Fitoterapia. 2024. Vol. 176. P.106024. DOI:https://doi.org/10.1016/j.fitote. 2024.106024.
29. Khan N.J., Zarafshan K., Singh S. Stinging nettle (Urtica dioica L.): a reservoir of nutrition and bioactive components with great functional potential // Journal of Food Measurement and Characterization. 2017. Vol. 11 (2). P. 9410. DOI:https://doi.org/10.1007/s11694-016-9410-4.
30. Сендерова О.М., Глинская Е.В., Глинский А.А., и др. Клинический опыт диагностики и лечения острой перемежающейся порфирии // Сибирский медицинский журнал. 2009. № 2. С. 108–110.
31. Андрейченко С.А., Суконников Т.А., Бычинин М.В., и др. Трудности диагностики острой порфирии: описание клинического случая // Анестезиология и реаниматология. 2019. № 3. С. 90–96. DOI:https://doi.org/10.17116/anaesthesiology201903190.
32. Gruznov D., Gruznova O., Popov N., et al. Antibacterial Activity of Chlorophyll and Hemin Polymeric Forms against S. aureus and E. coli // Macroheterocycles. 2024. Vol. 17 (4). P. 275–284. DOI:https://doi.org/10.6060/mhc245786g.
33. Gruznov D.V., Gruznova O.A., Lobanov A.V., et al. Antibacterial activity of chlorophyll polymeric form against test cultures S. aureus and E. coli. В сб.: BIO Web of Conferences. 2024. Vol. 83. P. 02001. DOI:https://doi.org/10.1051/bioconf/20248302001.
