ВЛИЯНИЕ Т-2 ТОКСИНА И ЗЕАРАЛЕНОНА НА СОДЕРЖАНИЕ ПРОВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЦИТОКИНОВ В ПЕРВИЧНЫХ КУЛЬТУРАХ КЛЕТОК ПЕЧЕНИ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
Микотоксины представляют собой опасные метаболиты грибов, которые содержатся в кормах и пищевых продуктах. В зараженных зерновых культурах часто обнаруживаются комбинации нескольких микотоксинов Fusarium, в том числе Т-2 токсина и зеараленона. Печень иг¬рает решающую роль в процессах детоксикации и является одной из основных мишеней микотоксинов. Цель исследования – изучение влияния Т-2 токсина и зеараленона на продукцию провоспалительных цитокинов интерлейкина-6 (ИЛ-6) и интерлейкина-8 (ИЛ-8) в первичных культурах клеток печени кур. Продукцию провоспалительных цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-8 изучали методом ИФА наборами производства «Вектор». Установлено, что концентрация провоспалительного цитокина IL-6 была повышена в результате воздействия Т-2 микотоксина как при 100,0 нмоль/дм3, так и при 1000,0 нмоль/дм3 в культуре гепатоцитов после 12 ч инкубации в результате быстрого токсического шока, но не при концентрации токсина 10,0 нмоль/дм3. При воздействии Т-2 токсином в течение 24 ч возникал адаптационный ответ и достоверных различий обнаружено не было. В концентрации ИЛ-8 достоверные различия были обнаружены после 24 ч инкубации по сравнению с контролем. При внесении аналогичных концентраций зеараленона значительных изменений в концентрации цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-8 не наблюдалось, за исключением случая с максимальной концентрацией токсина. При совместном внесении токсинов динамика содержания ИЛ-6 была сходна с таковой у Т-2 токсина, но потенцирующего эффекта не регистрировали. Содержание ИЛ-8 изменялось сильнее, чем при внесении мономикотоксина.

Ключевые слова:
Т-2 токсин, зеараленон, первичная культура клеток печени, провоспалительные цитокины, ИЛ-6, ИЛ-8
Текст
Текст (PDF): Читать Скачать

Введение. Микотоксины представляют собой опасные метаболиты грибов, которые содержатся в кормах и пищевых продуктах [1, 2]. Несколько классов этих соединений могут продуцироваться одним видом грибов. Особенно опасны в этом отношении виды из рода Fusarium [3–6]. Они могут производить трихотецены и зеараленон, которые признаны важными загрязнителями пищевых продуктов и кормов. Эти классы вызывают широкий спектр токсикологических эффектов, главным образом из-за разнообразия их химической структуры [7, 8].

В зараженных зерновых культурах часто обнаруживаются комбинации нескольких микотоксинов Fusarium [9, 10], представляющих угрозу для здоровья человека и животных [11]. Растет обеспокоенность по поводу опасности воздействия смесей этих микотоксинов в пищевых продуктах из-за их естественного совместного присутствия [12, 13].

Токсин Т-2 – один из самых сильнодействующих трихотеценов. Трихотецены включают группу близкородственных соединений, называемых сесквитерпеноидами, имеющими тетрациклический 12,13-эпокситрихотеценовый скелет, и продуцируются видами плесени Fusarium [14–16]. Алиментарное отравление представ­ляет собой наиболее распространенный путь воздействия на животных. С момента их первого открытия существовала обеспокоенность по поводу связи между воздействием трихотецена и здоровьем, основанная на их токсичности для животных, а также на их связи с токсикозами человека и животных. При остром воздействии высоких доз трихотеценов у животных появ­ляются такие признаки, как диарея, рвота, лейкоцитоз и кровотечение [15]. В чрезвычайно высоких дозах трихотецены могут вызвать шокоподобный синдром, который может привести к смерти. Токсин Т-2 считается основным возбудителем фатальной алиментарной токсической алейкии (АТА) у человека, поражает слизистую оболочку и иммунную систему. Подобное же происходит у животных [17–20]. Основными патолого-анатомическими находками являются лейкопения и некротические поражения полости рта, пищевода и желудка [21].

Зеараленон – нестероидный эстрогенный микотоксин, выделенный из нескольких разновидностей грибов Fusarium. Исследования на различных видах животных (например, на грызунах, свиньях и обезьянах) показали, что зеараленон и его метаболиты проявляют эстрогенную и анаболическую активность [22]. Кроме того, токсины Fusarium вызывают перекисное окисление липидов, ингибируют синтез белков и ДНК и вызывают гибель клеток [23].

Куры относительно толерантны к трихотеценам по сравнению с млекопитающими, однако присутствие токсина Т-2 в кормах служит ак­туальной проблемой в птицеводстве во всем мире [24–26]. Поскольку печень играет решающую роль в процессах детоксикации и является одной из основных мишеней трихотеценов, она особенно подвержена вредному воздействию токсина Т-2 [27, 28].

Цель исследования – изучить влияние Т-2 токсина и зеараленона на продукцию провоспалительных цитокинов интрелейкина-6 (ИЛ-6) и интерлейкина-8 (ИЛ-8).

Объекты и методы. Выделение гепатоцитов проводили, по аналогии с работами [29, 30], из трехнедельных цыплят-бройлеров-самцов КОББ 500, полученных от компании ООО «Челны-Бройлер». После обезглавливания животного в СО2 камере печень промывали и обескровливали. Сначала печень перфузировали 150 мл сбалансированного солевого раствора Хэнкса (HBSS), содержащего 0,5 ммоль/л этиленгликоля тетрауксусной кислоты (EGTA). После этого печень промывали 150 мл EGTA-HBSS, затем 100 мл MgCl2 и CaCl2 (оба 7 ммоль/л). После иссечения и мягкого встряхивания щипцами печень помещали на 45 мин в ледяной раствор бычьего сывороточного альбумина 25 мг/мл (БСА).

Фракции, обогащенные гепатоцитами, выделяли с помощью многоступенчатого дифференциального центрифугирования. Сначала клеточные суспензии трижды центрифугировали на низкой скорости (100×g) в течение 3 мин в среде Вильямса, с добавлением 0,22 % NaHCO3, 50 мг/мл гентамицина, 2 мм глютамина, 4 мкг/л дексаметазона, 20 МЕ/л инсулина и 5 % фетальной бычьей сыворотки (FBS). После трехкратной ресуспендации была получена очищенная фракция гепатоцитов.

Клеточную суспензию разливали в стеклянные флаконы из химически инертного стекла объемом 2 см3 каждый. Спиртовой раствор Т-2 токсина и зеараленона вносили во флаконы в количестве 0,001 см3. Контролем служили флаконы с клеточной суспензией – вносили этиловый спирт (96 об %) 0,001 см3. Дозы Т-2 токсина и зеараленона составили 0; 10; 100 и 1000 нМ/м3, по аналогии с работами [31]. Токсины были получены по аналогии с работой [25]. В последующем выдерживали флаконы с культурой в инкубаторе при температуре плюс 37 °С. Длительность инкубирования составила 12 ч и 24 ч. Затем клетки с помощью смеси растворов трипсина и версена подвергали диспергированию. Дисперигирующий раствор вносили в объеме 0,2 см3 на флакон и инкубировали в термостате при температуре плюс 37 °С. Период инкубации составил 20 мин. Для остановки действия дисперигирующей смеси вливали 1 см3 питательной среды, содержащей бычью сыворотку крови. Продукцию провоспалительных цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-8 изучали методом ИФА наборами производства «Вектор». Относительные концентрации цитокинов (пг/л) перерассчитывали, учитывая среднее значение монокультур гепатоцитов в отрицательном контроле, равном 1. Для стандартизации значений, полученных с помощью ранее упомянутого метода, определяли общую концентрацию белка клеточных лизатов.

Обработку результатов производили методом вариационной статистики (критерий достоверности Стьюдента). Разница между сравниваемыми значениями воспринималась достоверной при Р ≤ 0,05.

Результаты и их обсуждение. Результаты исследования содержания ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при внесении Т-2 токсина представлены в таблице 1.

 

Таблица 1

Содержание ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при внесении Т-2 токсина (m, n = 10)

 

Вносимое вещество

Концентрация, нМ/дм3

ИЛ-6

ИЛ-8

Длительность инкубации, ч

12

24

12

24

Контроль

0

1,0±0,03

1,0±0,03

1,0±0,02

1,0±0,03

Т-2 токсин

10

1,08±0,03

1,35±0,05*

0,84±0,03

1,22±0,04

Т-2 токсин

100

1,48±0,05*

1,42±0,05*

0,92±0,03

1,35±0,04*

Т-2 токсин

1000

1,64±0,05*

1,27±0,05*

0,83±0,03

1,48±0,05*

Здесь и далее: * Р ≤ 0,05.

 

 

Как следует из данных, представленных в таблице 1, концентрация ИЛ-6 отличалась в клеточной суспензии при внесении в культуру 100,0 и 1000,0 нмоль/дм3 Т-2 токсина после 12 ч инкубации: так, она достоверно увеличивалась относительно контрольных данных на 48 и 64 % соответственно. При этом внесение Т-2 токсина в концентрации 10,0 нмоль/дм3 не приводило к статистически значимому изменению концентрации ИЛ-6. Увеличение времени инкубации до 24 ч приводило к тому, что в культурах, куда вносили самую низкую дозу токсина, происходило усиление продукции ИЛ-6 до 35 % сверх контроля, однако при двух других концентра­циях наблюдалась тенденция к уменьшению содержания провоспалительного цитокина от величин, накопленных при 12 ч инкубации.

Концентрация ИЛ-8 отличалась в клеточной суспензии при внесении в культуру Т-2 токсина после 12 ч инкубации: так, она уменьшалась относительно контрольных данных от 17 до 8 % соответственно. Увеличение времени инкубации до 24 ч приводило к тому, что в культурах происходила активация синтеза ИЛ-8 до 48 % выше контроля.

Результаты исследования содержания ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при внесении зеараленона представлены в таблице 2.

 

 

Таблица 2

Содержание ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при внесении зеараленона (m, n = 10)

 

Вносимое

вещество

Концентрация, нМ/дм3

ИЛ-6

ИЛ-8

Длительность инкубации, ч

12

24

12

24

Контроль

0

1,0±0,03

1,0±0,03

1,0±0,03

1,0±0,03

Зеараленон

10

1,05±0,03

1,09±0,04

0,92±0,03

1,02±0,04

Зеараленон

100

1,07±0,03

1,16±0,05

0,97±0,03

1,05±0,04

Зеараленон

1000

1,24±0,04*

1,07±0,04

0,88±0,03

1,24±0,05*

 

 

Как следует из данных, представленных в таблице 2, концентрация ИЛ-6 незначительно отличалась в клеточной суспензии относительно контроля при внесении в культуру 10,0 и 100,0 нмоль/дм3 зеараленона после 12 ч инкубации и она увеличивалась от 5 до 7 %, что находится в пределах статистической погрешности. Достоверно увеличивалась концентрация ИЛ-6, относительно контрольных данных, на 24 % при внесении зеараленона в концентрации 1000,0 нмоль/дм3, что все равно меньше, чем при внесении Т-2 токсина. Увеличение времени инкубации до 24 ч приводило к тому, что в культурах, куда вносили самую низкую дозу токсина, происходило незначительное усиление продукции ИЛ-6 – от 9 до 16 % сверх контроля, однако изменения носили статистически недостоверный характер. При максимальной концентрации токсина наблюдалась тенденция к уменьшению содержания провоспалительного цитокина от величин, накопленных при 12 ч инкубации.

Концентрация ИЛ-8 статистически не отличалась в клеточной суспензии при внесении в культуру зеараленона после 12 ч инкубации относительно контроля. Увеличение времени инкубации до 24 ч приводило к тому, что в культурах происходила активация синтеза ИЛ-8 при максимальном внесении токсина до 24 % выше контроля.

Результаты исследования содержания ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при комбинированном внесении Т-2 токсина и зеараленона представлены в таблице 3.

 

Таблица 3

Содержание ИЛ-6 и ИЛ-8 в клеточной суспензии при комбинированном

внесении Т-2 токсина и зеараленона (m, n = 10)

 

Вносимое вещество

Концентрация, нМ/дм3

ИЛ-6

ИЛ-8

Длительность инкубации, ч

12

24

12

24

Контроль

0

1,0±0,03

1,0±0,03

1,0±0,02

1,0±0,03

Т-2 токсин + зеараленон

10

1,09±0,03

1,30±0,05*

0,89±0,03

1,28±0,04

Т-2 токсин + зеараленон

100

1,43±0,05*

1,35±0,05*

0,96±0,03

1,45±0,04*

Т-2 токсин + зеараленон

1000

1,69±0,05*

1,29±0,05*

0,85±0,03

1,62±0,05*

 

 

Как следует из данных, представленных в таблице 3, динамика концентрации ИЛ-6 имела те же тенденции, что и у Т-2 токсина, внесение зеараленона не изменяло профиль динамики содержания. В клеточной суспензии при внесении в культуру 100,0 и 1000,0 нмоль/дм3 Т-2 токсина после 12 ч инкубации достоверно увеличивалась относительно контрольных данных на 43 и 69 % соответственно. При этом внесение обоих микотоксинов в концентрации 10,0 нмоль/дм3 не приводило к статистически значимому изменению концентрации ИЛ-6. Увеличение времени инкубации до 24 ч приводило к тому, что в культурах, куда вносили самую низкую дозу токсинов, происходило усиление продукции ИЛ-6 до 30 % сверх контроля, однако при двух других концентрациях наблюдалась тенденция к уменьшению содержания провоспалительного цитокина от величин, накопленных при 12 ч инкубации.

Динамика концентрации ИЛ-8 имела те же тенденции, что и у Т-2 токсина, внесение зеараленона не изменяло профиль динамики содержания. После 12 ч инкубации она уменьшалась относительно контрольных данных от 15 до 4 %. Увеличение времени инкубации до 24 ч привело к тому, что внесение двух токсинов увеличивало содержание ИЛ-8 по сравнению с моновнесением – в культурах происходила активация синтеза ИЛ-8 до 62 % выше контроля.

Заключение. Таким образом, концентрация провоспалительного цитокина ИЛ-6 была повышена в результате воздействия Т-2 микотоксином как 100,0 нмоль/дм3, так и 1000,0 нмоль/дм3 в культуре гепатоцитов, после 12 ч инкубации в результате быстрой токсинной атаки, но не при концентрации токсина 10,0 нмоль/дм3. Однако в модели клеточной культуры, при воздействии
Т-2 токсином в течение 24 ч, что соответствует более длительному воздействию токсина, сопровождающемуся адаптационным ответом, достоверных различий обнаружено не было. В концентрации ИЛ-8 достоверные различия были обнаружены после 24 ч инкубации по сравнению с контролем. При внесении аналогичных концентраций зеараленона значительных изменений в концентрации цитокинов ИЛ-6 и ИЛ-8 не наблюдалось, за исключением случая с максимальной концентрацией токсина. При совместном внесении токсинов динамика содержания ИЛ-6 была сходна с таковой у Т-2 токсина, но потенцирующего эффекта не регистрировали, а содержание ИЛ-8 изменялось сильнее, чем при внесении монотоксина.

Список литературы

1. Diverse mycotoxin threats to safe food and feed cereals / R.L. Latham [et al.] // Essays in Biochemistry. 2023. № 67(5). P. 797–809. DOI:https://doi.org/10.1042/EBC20220221.

2. Физиологические основы диагностики и профилактики микотоксикозов в птицеводстве / В.Г. Вертипрахов [и др.]. Сергиев Посад: Всерос. науч.-исслед. и технолог. ин-т птицеводства РАН, 2023. 181 с.

3. Effect of abiotic stressors on T-2-producing environmental isolates of Fusarium sporotri-chioides / G.M. Yumangulova [et al.] // Journal of Pharmacy Research. 2017. Vol. 11. № 10. P. 1226–1229.

4. Пораженность кормов грибами рода фузариум / О.К. Ермолаева [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2019. Т. 239, № 3. С. 121–124.

5. Семенова С.А., Магдеева Э.А., Галиуллин А.К. Изучение антагонизма микроскопических грибов к патогенным микробам // Успехи медицинской микологии. 2014. Т. 12. С. 339–341.

6. Поиск антагонистов в отношении санитарно-показательных микробов почвы / С.А. Семенова [и др.] // Вестник Марийского государственного университета. Сер. «Сельскохозяйственные науки. Экономические науки». 2022. Т. 8, № 1 (29). С. 63–71.

7. Семенов Э.И. Сочетанное воздействие Т-2 токсина, дезоксиниваленола и зеараленона // Успехи медицинской микологии. 2015. Т. 14. С. 302–306.

8. Комбинированное воздействие микотоксинов на физиологические показатели крыс / Л.Р. Валиуллин [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2015. Т. 221, № 1. С. 45–48.

9. Микологическая оценка кормов в Республике Татарстан / Р.М. Потехина [и др.] // Ветеринарный врач. 2019. № 1. С. 19–23.

10. Оценка токсичности кормов по регионам Российской Федерации / С.А. Семенова [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2015. Т. 224, № 4. С. 196–199.

11. Случаи массового отравления животных, птиц и рыб в некоторых регионах Российской Федерации и стран СНГ / Э.И. Семенов [и др.] // Ветеринария. 2021. № 8. С. 39–44.

12. Комбинированные поражения животных и разработка средств профилактики и лечения / К.Х. Папуниди [и др.]. Казань: ФЦТРБ-ВНИВИ, 2019. 248 с.

13. Семенов Э.И. Фармако-токсикологические аспекты применения энтеросорбентов при сочетанных микотоксикозах: дис. … д-ра ветеринар. наук. Казань, 2019. 342 с.

14. Аналитика данных распространения Т-2 токсина в Республике Татарстан / И.Н. Штыров [и др.] // Международный вестник ветеринарии. 2021. № 1. С. 167–172.

15. Самсонов А.И., Дервянов В.Н. Профилактика Т-2 токсикоза норок // Ветеринарный врач. 2007. № 2. С. 17–18.

16. Обоснование введения в рацион животных комбинации сорбентов неорганической и органической природы при Т-2 токсикозе / Н.Н. Мишина [и др.] // Ветеринарный врач. 2019. № 2. С. 30–37.

17. Валиев А.Р., Семенов Э.И., Ахметов Ф.Г. Иммуносупрессия в патогенезе Т-2 микотоксикоза и ее фармакокоррекция // Ветеринарный врач. 2011. № 2. С. 4–6.

18. Screening drugs-potential immunomodulators for T-2 mycotoxicosis / E.I. Semenov [et al.] // Bali Medical Journal. 2017. № 6 (2). P. 110–114. DOI:https://doi.org/10.15562/bmj.v6i2.516.

19. Частота развития язвенных процессов в слизистой оболочке желудка свиней, обусловленных воздействием микотоксинов и колонизацией бактериями рода Helicobac-ter / Ф.М. Нургалиев [и др.] // Ветеринарный врач. 2020. № 2. С. 31–38.

20. Экспериментальный сочетанный микотоксикоз свиней на фоне инфекционной нагрузки / Э.И. Семенов [и др.] // Сельскохозяйственная биология. 2022. Т. 57, № 2. С. 371–383.

21. Мишина Н.Н. Профилактическая эффективность лигнин- и полисахаридсодержащих энтеросорбентов при сочетанном Т-2 и афлатоксикозе: дис. … канд. биол. наук. Казань, 2008. 162 с.

22. Изучение биохимических показателей клеток при воздействии зеараленона и Т-2 токсина / Н.Р. Касанова [и др.] // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2022. Т. 18, № 1. С. 28–32.

23. Влияние афлатоксина В1 на накопление малонового диальдегида в первичных культурах клеток печени / А.И. Самсонов [и др.] // Современные проблемы экспериментальной и клинической токсикологии, фармакологии и экологии: сб. тез. докл. Междунар. науч.-практ. конф. Казань, 2021. С. 191–195.

24. A case of laying hens mycosis caused by Fusarium Proliferatum / R.M. Potekhina [et al.] // Veterinary Medicine International. 2023. Vol. 2023. DOI:https://doi.org/10.1155/2023/5281260.

25. Effect of bee brood and zeolite on broiler chickens exposed by mycotoxin T-2 / E.I. Semenov [et al.] // Natural Volatiles and Essential Oils. 2021. Vol. 8. № 4. С. 3520–3531.

26. Эффективность адсорбентов при сочетанном микотоксикозе цыплят-бройлеров / С.А. Танасева [и др.] // Международный вестник ветеринарии. 2020. № 4. С. 50–56.

27. Перфилова К.В., Мишина Н.Н., Семенов Э.И. Обоснование компонентного состава комплексного средства «Цеапитокс» в отношении Т-2 токсина в опытах in vitro // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2021. Т. 247, № 3. С. 208–212.

28. Экспериментальное обоснование использования поликомпонентного сорбента для детоксикации печени от микотоксинов / Н.Н. Мишина [и др.] // Вестник Омского государственного аграрного университета. 2023. № 1 (49). С. 114–121.

29. Toxicity and oxidative stress induced by T-2 toxin and HT-2 toxin in broilers and broiler hepatocytes / L. Yang [et al.] // Food Chem. Toxicol. 2016. P. 128–137. DOI: 10.1016/ j.fct.2015.12.003.

30. Влияние Т-2 токсина и зеараленона на содержание белков теплового шока в первичных культурах клеток печени / А.И. Самсонов [и др.] // Ветеринарный врач. 2023. № 3. С. 22–29

31. Cellular effects of Т-2 toxin on primary hepatic cell culture models of chickens / M. Mackei [et al.] // Toxins. 2020. Vol. 12 (1) P. 46. DOI:https://doi.org/10.3390/toxins12010046.


Войти или Создать
* Забыли пароль?